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單細(xì)胞 RNA 測序
上海伯豪生物技術(shù)有限公司(簡稱:伯豪生物,官網(wǎng):http://www.shbio.com),專注于提供專業(yè)的生物醫(yī)藥和疾病診斷創(chuàng)新技術(shù)、產(chǎn)品和優(yōu)質(zhì)服務(wù)。
服務(wù)類別:分子與細(xì)胞總訪問:4225
最后更新:2024-9-20半年訪問:120
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伯豪生物官 www.shbio.com 新官網(wǎng)消息 單細(xì)胞 RNA 測序科研服務(wù)來了

1、SMART-seq

儀器平臺

2012 年,由美國和瑞典的科學(xué)家共同開發(fā)了稱為 Smart-Seq(Switching mechanism at 5’end of the RNA transcript)的技術(shù) [1]。在 2013 年,Nature Methods 雜志上報告了新的方案,被稱為 Smart-Seq2[2],隨后在 2014 年他們有公布了詳細(xì)的操作流程 [3]。獲取單細(xì)胞并裂解細(xì)胞后,含有 oligo-dT 的引物與 mRNA 的 poly- A 結(jié)合,逆轉(zhuǎn)錄酶 MMLV 進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,逆轉(zhuǎn)錄酶到達(dá) mRNA 5’末端時,MMLV 的末端轉(zhuǎn)移酶活性會在一鏈 cDNA 的 3'末端增加額外的胞嘧啶,這時 TSO 引物 3' 末端的 rGrG+ G 結(jié)合到首鏈末端的胞嘧啶,然后以首鏈 cDNA 為模版進(jìn)行延伸合成互補(bǔ)的第二鏈,全長 cDNA 經(jīng)過 PCR 擴(kuò)增后進(jìn)一步進(jìn)行測序文庫的構(gòu)建。

技術(shù)原理

伯豪生物單細(xì)胞 RNA 測序服務(wù) SMART-seq2 技術(shù)原理

▲SMART-seq2 技術(shù)原理

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伯豪優(yōu)勢

1、起始量低:1 個細(xì)胞起始,適用于難以滿足 10X Genomics 等平臺起始細(xì)胞量要求的樣本。

2、覆蓋度高: 測序覆蓋 cDNA 的全長序列,每個細(xì)胞能夠獲得上萬個基因的表達(dá)。

3、信息個性化: 除了獲得基因表達(dá)信息,數(shù)據(jù)能夠用于可變剪接,cSNP 等分析,以及帶 poly- A 結(jié)構(gòu)的 lncRNA 研究。

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技術(shù)參數(shù)

文庫結(jié)構(gòu)

單細(xì)胞 RNA 測序 SMART-seq2 文庫結(jié)構(gòu)

圖 SMART-seq2 文庫示意圖

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建議測序深度及參數(shù)

指標(biāo)

參數(shù)

測序深度

6Gb/cell

測序類型

PE150

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樣本要求

1、類型:新鮮組織,原代細(xì)胞,細(xì)胞系等。

2、來源:血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。

3、樣本量:單個細(xì)胞(或微量細(xì)胞)。

4、保存運(yùn)輸:細(xì)胞放入 SMART-seq 試劑盒指定的裂解液中,-80°C 保存,干冰運(yùn)輸。

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2、10X Genomics

儀器平臺

10X Genomics 公司的 Chromium 系統(tǒng)利用 8 通道的微流體“雙十字”交叉系統(tǒng),將含 barcode 的凝膠珠(Gel Beads)、細(xì)胞和酶的混合物、油三者混合,形成 GEMs(油包水的微體系)。GEMs 形成后,細(xì)胞裂解,凝膠珠自動溶解釋放大量 barcode 序列,隨后 mRNA 逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生帶有 10X barcode 和 UMI 信息的 cDNA,構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)測序文庫,其中 10X barcode 用于區(qū)分細(xì)胞,UMI 用于區(qū)分 mRNA 分子。

單細(xì)胞 RNA 測序 10Xgenomics 技術(shù)原理

圖 10X genomics 技術(shù)原理

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伯豪優(yōu)勢 3

1、通量高: 一張芯片具有 8 個獨(dú)立的通道,可供 8 個樣本同時上機(jī),每個通道可捕獲 10000 個細(xì)胞。

2、捕獲率高: 單細(xì)胞捕獲效率高達(dá) 65%,多細(xì)胞比例 <0.9%(1,000 個細(xì)胞中)。

3、延展性強(qiáng): 除了獲得單細(xì)胞 mRNA 的信息,還提供了單細(xì)胞 TCR/BCR、單細(xì)胞表面蛋白、單細(xì)胞 ATAC 等多種解決方案。

 

技術(shù)參數(shù)

  文庫結(jié)構(gòu)

10X Genomics 3’gene expression 文庫示意圖

圖 10X Genomics 3’gene expression 文庫示意圖

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建議測序深度及參數(shù)

指標(biāo)

參數(shù)

測序深度

50,000~100,000 reads/cell

測序類型

PE150

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樣本要求

1、類型:新鮮組織,原代細(xì)胞,細(xì)胞系等。

2、來源:血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。

3、樣本量及其它質(zhì)控要求:

樣本類型 樣本質(zhì)控要求
細(xì)胞懸液 >105 目標(biāo)細(xì)胞個數(shù)(底限 10,000 個細(xì)胞);
活率 >80%;
濃度 500-1,000 個細(xì)胞 /ul;
細(xì)胞間無粘連(成團(tuán)率 <5%);
無大于 40μm 的細(xì)胞碎片或其他顆粒物;
不存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑和非細(xì)胞的核酸分子。
血液 EDTA 抗凝的全血(不可肝素抗凝),>5ml。
組織 0.3cm×0.3cm(不超過 0.5cm×0.5cm)的新鮮組織,4~5 塊。

4、保存運(yùn)輸:

(1)細(xì)胞懸液:建議現(xiàn)場制備,如要運(yùn)輸,建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞保護(hù)液,4°C 運(yùn)輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。

(2)血液:EDTA 抗凝的全血,4°C 運(yùn)輸,2 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室;或提取 PBMC 后凍存,干冰運(yùn)輸。

(3)組織:建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞組織保護(hù)液,4°C 運(yùn)輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。

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3、BD Rhapsody

儀器平臺

BD Rhapsody 技術(shù)利用卡式芯片在磁性的寡核苷酸條形碼標(biāo)記微球上實(shí)現(xiàn)單細(xì)胞捕獲和 mRNA 轉(zhuǎn)錄本的分子標(biāo)簽,然后將這些微球合并到單個管中用于 cDNA 擴(kuò)增和文庫構(gòu)建。可滿足 100~10000 個細(xì)胞的自動分選、擴(kuò)增及建庫。

單細(xì)胞 RNA 測序 BDRhapsody 技術(shù)原理

圖 BD Rhapsody 技術(shù)原理

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此外,該技術(shù)使用帶有寡核苷酸的高質(zhì)量抗體(Ab-oligos),這條寡核苷酸帶有抗體特異的條形碼,細(xì)胞在經(jīng)過 Ab-oligos 標(biāo)記后,可在單細(xì)胞水平同時獲得轉(zhuǎn)錄組和蛋白表達(dá)。

單細(xì)胞 mRNA 與蛋白同時測序

圖 單細(xì)胞 mRNA 與蛋白同時測序

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伯豪優(yōu)勢 2

高 效 每個樣本可測  100~10000  個細(xì)胞;
2 天內(nèi)完成細(xì)胞懸液制備、單細(xì)胞捕獲、擴(kuò)增以及建庫。
靈 活 抗體標(biāo)簽技術(shù)可實(shí)現(xiàn)多樣本混合捕獲;
可選擇全轉(zhuǎn)錄組測序或目標(biāo)基因測序。
可靠 利用成像系統(tǒng)對單細(xì)胞捕獲過程進(jìn)行質(zhì)控;
單細(xì)胞捕獲效率高達(dá) 80%,多細(xì)胞比例 <1%(1,000 個細(xì)胞中)。
整合 可同時檢測單個細(xì)胞的 mRNA 水平與蛋白水平。

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技術(shù)參數(shù)

文庫結(jié)構(gòu)

BD Rhapsody 單細(xì)胞 RNA 測序基因表達(dá)文庫示意圖

圖 BD Rhapsody 基因表達(dá)文庫示意圖

 

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  建議測序深度及參數(shù)

指標(biāo)

參數(shù)

測序深度

50,000~100,000 reads/cell

測序類型

PE150

 

樣本要求

1、類型:新鮮組織,原代細(xì)胞,細(xì)胞系等。

2、來源:血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。

3、樣本量及其它質(zhì)控要求:

樣本類型 樣本質(zhì)控要求
細(xì)胞懸液 > 10*  目標(biāo)細(xì)胞個數(shù)(底限   10,000  個細(xì)胞);
活率 >80%;
濃度 500-1,000 個細(xì)胞 /ul;
細(xì)胞間無粘連(成團(tuán)率 <5%);
無大于 40um 的細(xì)胞碎片或其他顆粒物;
不存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑和非細(xì)胞的核酸分子。
血液 EDTA  抗凝的全血(不可肝素抗凝),>5ml。
組織 0.3cm×0.3cm(不超過 0.5cm×0.5cm)的新鮮組織,4~5  塊。
 

4、保存運(yùn)輸:

(1)細(xì)胞懸液:建議現(xiàn)場制備,如要運(yùn)輸,建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞保護(hù)液,4°C 運(yùn)輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。

(2)血液:EDTA 抗凝的全血,4°C 運(yùn)輸,2 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室;或提取 PBMC 后凍存,干冰運(yùn)輸。

(3)組織:建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞組織保護(hù)液,4°C 運(yùn)輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。

分析流程

單細(xì)胞 RNA 測序數(shù)據(jù)質(zhì)控及過濾

圖 數(shù)據(jù)質(zhì)控及過濾

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單細(xì)胞 RNA 測序去除批次效應(yīng)

圖 去除批次效應(yīng)

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單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群注釋

圖 單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群注釋

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單細(xì)胞 RNA 測序樣本間的細(xì)胞構(gòu)成差異

圖 單細(xì)胞 RNA 測序樣本間的細(xì)胞構(gòu)成差異

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單細(xì)胞 RNA 測序 Marker 基因分析

圖 單細(xì)胞 RNA 測序 Marker 基因分析

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單細(xì)胞 RNA 測序擬時序分析

圖 單細(xì)胞 RNA 測序擬時序分析

單細(xì)胞 RNA 測序擬時序 GO 注釋

圖 單細(xì)胞 RNA 測序擬時序 GO 注釋

單細(xì)胞 RNA 測序擬時序分化轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)

圖 單細(xì)胞 RNA 測序擬時序分化轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)

單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群的功能富集分析

圖 單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群的功能富集分析

 

單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群的功能富集在樣本間的差異

圖 單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞亞群的功能富集在樣本間的差異

單細(xì)胞 RNA 測序樣本間的功能差異分析

圖 單細(xì)胞 RNA 測序樣本間的功能差異分析

單細(xì)胞 RNA 測序細(xì)胞通訊網(wǎng)絡(luò)

圖 細(xì)胞通訊網(wǎng)絡(luò)

應(yīng)用領(lǐng)域

1、胚胎發(fā)育

2、器官發(fā)育

3、干細(xì)胞分化

4、神經(jīng)科學(xué)

5、腫瘤微環(huán)境

6、用藥指導(dǎo)

7、病毒感染

參考文獻(xiàn)

[1] Ramskold D, Luo S, Wang YC, et al. Full-length mRNA-Seq from single-cell levels of RNA and individual circulating tumor cells. Nat Biotechnol 2012, 30(8):777-782.

[2] Picelli S, Björklund ÅK, Faridani OR, et al. Smart-seq2 for sensitive full-length transcriptome profiling in single cells. Nat Methods 2013, 10(11):1096-8.

[3] Picelli S, Faridani OR, Björklund AK, et al. Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nat Protoc 2014, 9(1):171-81.

[4] Tang F, Barbacioru C, Wang Y, et al. mRNA-Seq whole-transcriptome analysis of a single cell. Nat Methods 2009, 6(5):377-382.

[5] Yan L, Yang M, Guo H, et al. Single-cell RNA-Seq profiling of human preimplantation embryos and embryonic stem cells. Nat Struct Mol Biol 2013, 20(9):1131-1139.

[6] Cui Y, Zheng Y, Liu X, et al. Single-Cell Transcriptome Analysis Maps the Developmental Track of the Human Heart. Cell Rep 2019, 26(7):1934-1950.e5.

[7] Zhou F, Li X, Wang W, et al. Tracing haematopoietic stem cell formation at single-cell resolution. Nature 2016, 533(7604):487-92.

[8] Zhou J, Xu J, Zhang L, et al. Combined Single-Cell Profiling of lncRNAs and Functional Screening Reveals that H19 Is Pivotal for Embryonic Hematopoietic Stem Cell Development. Cell Stem Cell 2019, 24(2):285-298.e5.

[9] Li CL, Li KC, Wu D, et al. Somatosensory neuron types identified by high-coverage single-cell RNA-sequencing and functional heterogeneity. Cell Res 2015, 26(1):83-102.

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[11] Kim D, Kobayashi T, Voisin B, Jet al. Targeted therapy guided by single-cell transcriptomic analysis in drug-induced hypersensitivity syndrome: a case report. Nat Med 2020,26(2):236-243.

[12] Yu Zhao, Zixian Zhao, Yujia Wang, et al. Single-cell RNA expression profiling of ACE2, the putative receptor of Wuhan 2019-nCov. bioRxiv 2020.

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