細(xì)胞的離心分離基礎(chǔ)和分離實例
細(xì)胞的離心分離基礎(chǔ)和分離實例
Yu XingMing.2006
利用細(xì)胞的特性[尺寸、密度、電特性、表面(抗原)性質(zhì)，光散射特性等等]可以用各種方法分離和純化細(xì)胞。離心分離是利用不同尺寸和密度的細(xì)胞在離心場中沉降行為的不同，從組織勻漿或血液中分離純化的技術(shù)。用離心技術(shù)分離和純化細(xì)胞主要依賴的方法是差分離心、速率－區(qū)帶密度梯度離心、等密度離心和利用特殊轉(zhuǎn)頭的細(xì)胞浮選離心。
下面的表格概括了細(xì)胞離心分離純化主要方法：（文獻(xiàn)1）
|
分離依據(jù) |
方法名稱 |
離心加速度 |
梯度形狀 |
使用工具 |
局限性 |
優(yōu)點 |
|
細(xì)胞密度
（ρ） |
平衡
等密
度離
心 |
比較高
(100 ～
30,000 ×
g） |
連續(xù)或不連續(xù)
梯度 |
甩平轉(zhuǎn)頭，固定
角轉(zhuǎn)頭， 區(qū)帶轉(zhuǎn)
頭 |
離心力較
大，等密度
純樣品區(qū)帶
可能重疊 |
細(xì)胞易聚合；應(yīng)用面較
面較廣 |
|
沉降速度（細(xì)胞平
均直徑d 密度ρ） |
差分離心 |
1 ～ 300 ×g |
無梯度 |
角式為主 |
低分辨率 |
快速，簡易 |
|
單位重力
加速
度沉
降 |
1g |
連續(xù)梯度 |
特殊分離容器 |
容量50 × 106個細(xì)胞，
特殊裝備，
時間長 |
簡單，價廉 | |
|
速率
－區(qū)
帶離
心 |
20 ～ 1 ，
000×g |
連續(xù)梯度，線性
或等速度沉降
梯度，ρ梯度介
質(zhì)≤ρ細(xì)胞 |
甩平轉(zhuǎn)頭或區(qū)帶
轉(zhuǎn)頭 |
中等分辨
率，容量范
圍寬 |
大容量用區(qū)帶轉(zhuǎn)
頭，小容量用甩平
轉(zhuǎn)頭，后者操作簡
單 | |
|
離心
浮選 |
100 ～
3,000×g |
無梯度 |
細(xì)胞浮選轉(zhuǎn)頭
（ 日立或
Beckman） |
裝置費用高 |
快速，高分辨率，
處理量較大 |
細(xì)胞離心分離純化概述：
1. 利用細(xì)胞密度差異進(jìn)行分離：
一般的做法是在連續(xù)或者不連續(xù)（階梯）梯度液上表面鋪樣品，梯度的范圍應(yīng)該包含被分離的細(xì)胞的密度，經(jīng)過離心達(dá)到平衡后各種細(xì)胞沉降在它們各自的等密度區(qū)形成比較純的單一細(xì)胞分布區(qū)帶。這種等密度離心法可以用于制備或分析用途。用于制備時要注意在勻漿中可能有多種不同密度的細(xì)胞，如果它們的密度差很小，離心后會造成各個細(xì)胞區(qū)帶之間的重疊。因此要優(yōu)先考慮利用細(xì)長離心管，合適的密度范圍；較少的加樣量（離心管容量的2％～3％）；或者用同一個甩平轉(zhuǎn)頭進(jìn)行2～3 次分離；每一次分離的最大、最小密度梯度差減少（即減少梯度斜率；分別用凸指數(shù)及凹指數(shù)梯度曲線進(jìn)行分離；用不同的等滲液改變不同細(xì)胞在梯度介質(zhì)中的浮密度（文獻(xiàn)2）。
在離心管中細(xì)胞勻漿可以鋪在預(yù)形成的連續(xù)或不連續(xù)梯度液的上部或鋪在梯度液的中間某一位置，后者可以在離心過程中讓部分密度較小的細(xì)胞上浮，讓一些密度較大的細(xì)胞沉降，減少了沉降距離，從而縮短了離心時間。
不連續(xù)的階梯梯度常用于血細(xì)胞分離或肝細(xì)胞分離，作血細(xì)胞分離時梯度材料可選擇Ficoll-metizoate，肝細(xì)胞分離可選擇Nycodenz 或metrizamide ( 文獻(xiàn)3)。
2. 根據(jù)不同細(xì)胞的沉降速度差異進(jìn)行分離：
由于細(xì)胞在梯度介質(zhì)中的沉降速度和細(xì)胞直徑的平方成正比，和細(xì)胞與介質(zhì)密度差一次方成正比（參考講座文獻(xiàn)2－“實驗離心技術(shù)的基本計算”）所以影響沉降速度的首要參數(shù)是細(xì)胞尺寸，其次才是密度。
，ν的單位是（厘米/秒）
公式中 d 為細(xì)胞直徑（cm）
σ為細(xì)胞密度（克/cm3） η為介質(zhì)粘性系數(shù)
ρ為梯度介質(zhì)密度（克/cm3） ω為轉(zhuǎn)頭旋轉(zhuǎn)角速度
r 為細(xì)胞所在位置與旋轉(zhuǎn)中心的距離（cm）
ⅰ. 差分離心：
在不存在密度梯度條件下分離細(xì)胞是這種方法的主要特點，差分離心可以是利用地球重力（1g），也可以是利用低速離心分離組織勻漿。在重力或離心力作用下一些比較大的細(xì)胞沉降速度較快，當(dāng)它們已變成沉淀時，大部分比較小的的細(xì)胞由于沉降速度慢而仍留在上清液中。很明顯在大的細(xì)胞變成沉淀時一部分接近離心管底的較小細(xì)胞在離心力也已變成沉淀，第一次離心可以使最大顆粒細(xì)胞全部沉淀但沉淀中少量的較小細(xì)胞降低了分辨率和純度。我們可以用第一次離心同樣轉(zhuǎn)速和時間將第一次沉淀稀釋后再離心（每次都要用同樣的緩沖液稀釋）（這叫在離心機中“洗”），重復(fù)數(shù)次可以得到較純的大顆粒沉淀。各次上清液合并以更高轉(zhuǎn)速離心，重復(fù)以上過程數(shù)次，就可以得到各種較純的不同大小的顆粒的沉淀。如果利用某些特殊梯度材料（如dextran percoll 可以用 小的離心次數(shù)得到較好的結(jié)果。（文獻(xiàn)4）。
ⅱ. 依賴重力加速度沉降：
不用離心機，將細(xì)胞懸液鋪在預(yù)形成密度梯度上表面，在重力作用下細(xì)胞沉降。一般設(shè)計的密度梯度采用較小的密度變化范圍，其最大密度小于密度最大的細(xì)胞密度。不同密度的細(xì)胞以很慢的速度按不同層次沉降。在最大密度細(xì)胞達(dá)到底部之前進(jìn)行分部收集。（收集的方法參照“離心技術(shù)講座”文章3a）
ⅲ. 利用速率－區(qū)帶密度梯度離心法分離細(xì)胞：
在本質(zhì)上與重力沉降是一樣的，但是利用離心場來減少分離的時間。小容量樣品用甩平轉(zhuǎn)頭，大容量樣品用區(qū)帶轉(zhuǎn)頭，對于較少數(shù)量的細(xì)胞（106 ～108），并且不同細(xì)胞的沉降速度有較大差異，用甩平轉(zhuǎn)頭離心分離可以得到很滿意的結(jié)果。對于較大數(shù)量的細(xì)胞（＞109）可以考慮利用區(qū)帶轉(zhuǎn)頭。區(qū)帶轉(zhuǎn)頭操作是離心技術(shù)中比較復(fù)什的分離工藝，需要較熟練的操作人員，細(xì)心的工作才能得到成功。由于在區(qū)帶轉(zhuǎn)頭中離心分離不存在用離心管分離時產(chǎn)生的壁部效應(yīng)（Wall effect）參考加離心技術(shù)講座文獻(xiàn)3），可以一次離心收獲大量比較純的細(xì)胞。
曾有人在甩平轉(zhuǎn)頭的吊桶中加特殊的適配器（套管）來分離純化少量的細(xì)胞（＞5 ×107），提高了分離的純度（文獻(xiàn)5）。
如果不同細(xì)胞間尺寸差別不大，在離心場中沉降速度差別不大；或者需要制備大量的細(xì)胞用這個方法就不太合適。
iv. 離心浮選
利用一個特別的錐形轉(zhuǎn)頭，錐頭方向與離心力方向相同，樣品從錐頭進(jìn)入，利用離心力在圓錐形離心管中對細(xì)胞產(chǎn)生的逆流效應(yīng)，可以有效地分離各種細(xì)胞（如各種培養(yǎng)細(xì)胞，酵母細(xì)胞，各種血細(xì)胞，受精卵等等）離心浮選轉(zhuǎn)頭一般配備在低速或高速低溫離心機中（如Hitachi 的R5E 離心浮選裝置，Beckman 的JE-6B 離心浮選系統(tǒng)）由于樣品是從圓錐頭部壓入，每種細(xì)胞都受到離心力和由于錐度形成的流速梯度產(chǎn)生的反向力，不同形狀、尺寸、不同密度的細(xì)胞在錐形離心室中不同位置達(dá)到力的平衡從而形成不同種類細(xì)胞的區(qū)帶，按順序從錐室大頭排出。
這個方法的特點是
l 不需要制備密度梯度；
l 可以分離107 ～109 個細(xì)胞；
l 最使用于分離平均尺寸為2μm~50μm 的細(xì)胞；
l 由于錐形離心管用透明材料制成，在離心室門蓋上可以安裝透明窗用于觀察分離情況并可以裝置攝像機通過屏幕觀察分離過程；
l 加樣泵有較大的流量1～120 毫升/分，可以在很短時間內(nèi)用較低的轉(zhuǎn)速（最高
不超過5,000rpm）成功分離各種細(xì)胞；
l 不損傷細(xì)胞；
l 很高的分辨率；
l 設(shè)備投資很高，操作者需培訓(xùn)積累操作經(jīng)驗。因此應(yīng)用受到很大限制。
3. 用于細(xì)胞分離的密度梯度
在講座3 中已較詳盡地敘述了密度梯度材料，梯度形狀，梯度離心等問題，對于細(xì)
胞離心分離，對密度梯度材料還有一些特別重要的提示：
l 對細(xì)胞無毒性；
l 可以配制等滲液；
l 不會滲入細(xì)胞內(nèi)部；
l 離心后作分部收集，易從收集液中除去分離介質(zhì)（如透析）；
l 較低的粘性系數(shù)。
用于細(xì)胞分離最好的梯度材料是：Percoll, Nycodenz, Ficoll, metrizamide 和小牛血清白蛋白。它們的性質(zhì)已在講座文獻(xiàn)的（3），（3）a，（18）中已說明。
細(xì)胞分離常用的梯度可以是線性的，非線性的（凸指數(shù)或凹指數(shù)）連續(xù)的或不連續(xù)的，梯度制備方法參考講座文獻(xiàn)3（a）。
需要指出的是細(xì)胞離心配置的梯度液必須是等滲的，沿整個離心管長度方向滲透壓變化要小于10％，也就是說細(xì)胞在沉降過程中收縮和膨脹都非常小，它們的基本性狀和離心分離前基本一致。梯度材料研制和生產(chǎn)廠對于配制各種等滲液都提供了詳細(xì)資料。（講座文獻(xiàn)18）
4. 細(xì)胞離心分離過程中常常遇到的一些問題
i. 細(xì)胞聚集：
細(xì)胞聚集后在離心過程中的沉降行為與單個細(xì)胞完全不同，因此出現(xiàn)細(xì)胞聚集會影響分離純度。避免的方法是添加一些防止粘結(jié)的成分如小牛血清白蛋白，脫氧核糖核酸酶（D Nase ，防止膠結(jié)）、蛋白酶（protease ）、EDTA 等；（參考文獻(xiàn)6）
關(guān)于離心分離溫度，有些論文設(shè)在4℃離心分離細(xì)胞效果很好，也有人認(rèn)為初步分離時溫度應(yīng)保持在20℃以上。（文獻(xiàn)7）
ii. 在梯度液中細(xì)胞過載：
在密度梯度離心中，每種細(xì)胞的數(shù)量都不能超過對應(yīng)于它的密度的梯度液的容量， 也就是每種細(xì)胞在梯度液中所占有的梯度層的厚度是受限制的，過分厚的純樣品區(qū)帶會與別的細(xì)胞的純樣品區(qū)帶相重疊；這是問題的一方面。另一方面，雖然垂直管轉(zhuǎn)頭在高速離心時，它的離心管縱切面可以容納更多的樣品分子（與甩平轉(zhuǎn)頭的離心管橫剖面相比較），但在離心完成、梯度從垂直方向轉(zhuǎn)換到水平方向后，每個純樣品所占據(jù)的離心管中心軸上的寬度很大。如果初始樣品中所含的細(xì)胞品種很多，純化后也會造成純樣品帶的重疊。關(guān)于這個問題沒有精確的數(shù)學(xué)計算，全靠用戶在實驗中逐漸積累經(jīng)驗。這涉及待分離樣品中細(xì)胞的濃度，和梯度離心時的加樣量（2％～5％離心管容量）以及梯度的形狀（梯度曲線的斜率，連續(xù)梯度或者階梯梯度）等等。
iii. 壁部效應(yīng)：
在角式轉(zhuǎn)頭中沿離心力方向沉降的細(xì)胞接近離心管壁部時，與在離心力分力作用下沿管壁下滑的細(xì)胞碰撞，造成在角式轉(zhuǎn)頭離心管近外壁部形成了一個“壁部效應(yīng)區(qū)”，這個壁部效應(yīng)區(qū)從離心管上部到下部逐漸加寬。由于壁部效應(yīng)，可能會造成部分細(xì)胞的聚集而影響分離純度，也可能有一小部分細(xì)胞由于碰撞而受損。這種影響在用固定角式轉(zhuǎn)頭作等密度離心時尤為顯著。所以細(xì)胞離心分離除浮選轉(zhuǎn)頭外一般小容量選擇甩平轉(zhuǎn)頭，大容量選擇區(qū)帶轉(zhuǎn)頭。
iv. 旋渦效應(yīng)：
在加速或減速過程中在離心管中產(chǎn)生的小旋渦會影響梯度的完整，在減速過程中還會影響已被分離的純樣品帶的寬度，轉(zhuǎn)速500rpm～1000rpm 之間往往在復(fù)合向心力、也就是Coriolis 力的作用下在離心管中會產(chǎn)生渦旋，渦旋在下列情況下可以減少：
l 增加回轉(zhuǎn)半徑；
l 慢加速和慢減速（根據(jù)不同轉(zhuǎn)頭，不同容量，不同離心方法可以多檔控制的加、減速速率）；
l 縮小離心管直徑（∮10mm 以下，這在大多數(shù)情況下不現(xiàn)實）；
l 使用一些抗旋渦的緩沖液（文獻(xiàn)5）；
l 應(yīng)用有較陡斜率的密度梯度。
l 縮小離心管直徑（∮10mm 以下，這在大多數(shù)情況下不現(xiàn)實）；
l 使用一些抗旋渦的緩沖液（文獻(xiàn)5）；
l 應(yīng)用有較陡斜率的密度梯度。
v. 液滴效應(yīng)：
在預(yù)形成密度梯度液上表面加待分離的細(xì)胞樣品，如果不馬上離心，就會有很少的液滴滴入梯度層。這個現(xiàn)象在加樣后幾分鐘內(nèi)會發(fā)生，其結(jié)果是在樣品與梯度液的界面上出現(xiàn)層間擴(kuò)散（文獻(xiàn)8）而影響分離效果，減少這種影響的方法是
l 降低樣品濃度；
l 提高梯度液的初始斜率；
l 在鋪完樣品后立即放入轉(zhuǎn)頭并開始離心分離。
vi. 離心力的選擇：
離心力選擇不當(dāng)會影響細(xì)胞活力改變、細(xì)胞的內(nèi)部構(gòu)造、影響細(xì)胞的裂介和復(fù)制。這種影響常出現(xiàn)在：
l 長時間的離心分離過程；
l 轉(zhuǎn)頭的快加速；
l 過大的離心力產(chǎn)生了較大的流體靜壓；
l 應(yīng)用較高轉(zhuǎn)速的等密度離心法。
如果我們選用較低的轉(zhuǎn)速，粘度較小的梯度材料（本講座文獻(xiàn)18）；利用細(xì)胞浮選轉(zhuǎn)頭等都可以減少這種影響。
vii． 滲透效應(yīng)：
很多細(xì)胞特別是哺乳動物細(xì)胞沒有堅固的細(xì)胞壁，周圍的介質(zhì)很容易滲透到細(xì)胞內(nèi)部或者細(xì)胞內(nèi)液體反向滲透到周圍介質(zhì)中而引起細(xì)胞的膨脹和收縮，從而改變離心過程中細(xì)胞的沉降（或上浮）特性。因此配制等滲的梯度液是必要的（講座文獻(xiàn)18）
（二）實用細(xì)胞離心分離方法舉例
（1） 血細(xì)胞純化：
血細(xì)胞由多種類型的但細(xì)胞懸液組成，每種細(xì)胞都有它們自身的特性和功能并廣泛被用于醫(yī)學(xué)臨床和診斷。多年來研究人員對血細(xì)胞分離純化作了大量工作，實驗室研究和血液成分分離都已廣泛使用各種離心設(shè)備，如用于醫(yī)學(xué)臨床分析、診斷的全自動血細(xì)胞洗滌離心機（Hitachi MC-450,24 管，Sorvall CW-2,12 管），用于大量血液（標(biāo)準(zhǔn)200ml，300ml，400ml,500ml 三聯(lián)或四聯(lián)血袋）成分分離用的大容量低速、低溫離心機（參考技術(shù)講座文獻(xiàn)1）等等。下面我們將以實驗室研究為主線，舉例說明各種血細(xì)胞分離純化方法。
由B∮yum 研發(fā)并在多年來被普遍應(yīng)用的血細(xì)胞純化方法是用梯度材料Na-metrizaate 與Ficoll 的混合液作密度梯度離心，把血球中的紅血球，多形核細(xì)胞、淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞、血小板分離純化。這種溶液有不同的商品名稱如Lymphoprep（Nycomed Pharma 公司）、Ficoll －pague （pharmacia-Biosystems 公司）等，都可以作這一用途。（文獻(xiàn)9）
下面的例子是在室溫下用低速離心機作血細(xì)胞分離的實驗。
例1．人血中單核（白）細(xì)胞的純化
|
i. |
用抗凝血劑處理血樣，常用抗凝劑為0.32％檸檬酸鈉。 |
|
ii. |
用等容積的生理鹽水稀釋血樣。 |
|
iii. |
在10ml～15ml 離心管中先注入3ml metrizoate-Ficoll 分離液，在其上鋪6ml 已稀釋 |
|
|
血樣。 |
|
iv. |
用甩平轉(zhuǎn)頭600g（1,800~3,000ropm，臺式機）×20 分，20℃。（ 不要在4—5℃低 |
|
|
溫離心，否則分離效果將很差。 |
|
v. |
離心后用巴氏移液吸管從血漿與分離液界面中間吸出血細(xì)胞層，其中含有單核（白） |
|
|
細(xì)胞和部分血小板。 |
|
vi. |
加入幾毫升生理鹽水，降低收集的血細(xì)胞濃度。 |
|
vii. |
同一離心轉(zhuǎn)頭，同一離心管250g（1200rpm 左右）×5 分鐘20℃�？梢杂猛还� |
|
|
藝在離心機中洗幾次。 |
|
viii. |
收集沉淀在生理鹽水中保存。 |
例2. 從人血中分離紅細(xì)胞，單核（白）細(xì)胞，中性（白）細(xì)胞
i. 新鮮人血（3～5）ml 用抗凝劑處理。
ii. 15ml 離心管中先注入5ml 分離液Polymorphprep（Nycomed Pharma A/S 公司產(chǎn)品）， 然后鋪上用抗血凝劑處理過的人全血5ml 。
iii. 臺式低速離心機，甩平轉(zhuǎn)頭，450g（1500～1600rpm）×35 分鐘，18℃～23℃。
iv. 分離結(jié)果：離心管上部近40％液柱為血漿，接下來一薄層為單核細(xì)胞再下面間隔了少量分離液后又是一薄層中性（白）細(xì)胞，再往下近30％液柱為分離液，紅細(xì)胞在底部（沉淀）。
注意：溫度過高，或離心力過大，或離心時間過長都可能使中性（白）細(xì)胞沉淀。
表：用于人血細(xì)胞分離純化的各種商品分離液（摘自文獻(xiàn)1）
|
名稱 |
成分 |
用途 |
生產(chǎn)商 |
|
Lymphoprep |
9.6%Na-metrizoate, 5.6% Ficoll |
單核細(xì)胞分離 |
Nycomed-pharma |
|
Ficoll-page |
9.6 Na-diatrizoate 5.6% Ficoll |
單核細(xì)胞分離 |
Pharmacia-Biosy-st ems |
|
Nycoprep 1.077 |
14.1% Nycodenz 0.44% Nacl |
單核細(xì)胞分離 |
Nycomed-pharma |
|
Nycoprep mixer |
19.0% Nycodenz 0.2% Nacl |
單核細(xì)胞分離 |
Nycomed-pharma |
|
Nycoprep 1.068 |
13.0% Nycodenz 0.58% Nacl |
單核（白）細(xì)胞淋巴細(xì)胞分離 |
Nycomed-pharma |
|
Nycoprep 1.063 |
12.0% Nycodenz 0.58% Nacl |
血小板分離 |
Nycomed-pharma |
|
Mono-poly Resolving medium |
15.5% Na-diatrizoate 8.18% Ficoll |
多形核細(xì)胞分離 |
Flow-Laboratories |
|
Polymorphprep |
13.8% Na-metrizoate 8.0% Dextran 500 |
單核細(xì)胞中性白細(xì)胞紅細(xì)胞分離 |
Nycomed-pharma |
(2) 用等密度離心法分離肝細(xì)胞：
肝細(xì)胞的離心分離在整個細(xì)胞純化工藝中具有典型性。以鼠肝為例，每克鼠肝中有1.1 ×108 個肝主質(zhì)細(xì)胞（Parenchymal）；107 個肝星形細(xì)胞（Kupffer cell），2×107 個內(nèi)皮細(xì)胞和1.6×107 個儲脂細(xì)胞。
對這些肝細(xì)胞的分離純化，研究人員多年來做了大量實驗研究，下面概述一些典型離心分離實例：
例3：肝細(xì)胞的連續(xù)密度梯度分離
離心分離工藝需要下列基本設(shè)備，化學(xué)品和溶劑：
l 帶有電磁攪拌器或旋翼攪拌器的密度梯度制備儀；
l 蠕動泵，硅膠管（內(nèi)徑1～1.5mm，外徑3mm 左右），有些商品的自動梯度制備和收集（如日立DGF-U）本身就帶有蠕動泵，硅膠管；
l 帶有恒溫裝置的阿貝折射儀；
l 帶水平轉(zhuǎn)頭的低溫，低速離心機（臺式、落地均可）；
l 離心管，最好是15ml corex 玻璃離心管；
l 平衡鹽溶液GBSS，配置如下：Nacl（8,000mg/l）；KCL（370mg/l）；Mg SO4·7H2O
（70mg/l）；NaH2PO4·2H2O(150mg/l)；Cacl2·2H2O(220mg/l)；NaHCO3(227mg/l)；
KH2PO4(30mg/l)；Mgcl2·6H2O(210mg/l)；葡萄糖（1,000mg/l）；調(diào)節(jié)到PH7.4；
滲透壓275～285mOsm，消毒過濾后儲存于4℃；
l 28.7％（W/V）Nycodenz 或者30％（W/V）metrizamide 在無Nacl GBSS 中，滲透壓285 mOsm, PH7.4；
l 竇狀肝細(xì)胞（制備方法參見文獻(xiàn)1，P313 或其他文獻(xiàn)）；
l 0.5％（W/V）臺酚藍(lán)（trypan blue ）在生理鹽水中；
l 制備過氧化物酶染色需要的條件（參見文獻(xiàn)10）
分離方法：
i. 從一個鼠肝中制備（2～3）×106 個肝竇狀細(xì)胞；
ii. 細(xì)胞在15ml GBSS 中洗三次；
iii. 低速離心300g（1200～1300rpm）×5 分鐘，室溫；
iv. 沉淀用6ml GBSS 制成懸液；
v. 制備梯度液和離心分離：
l 將30％（W/V）metrizamide 或28.7％（W/V）Nycodenz（最好是Nycodenz，因為它可 以高溫滅菌）分別用GBSS 稀釋到20％和19.1％－溶液A
l 用溶液A（metrizamide）（3.1 倍體積）稀釋iv 細(xì)胞懸液，成為8％（W/V）metrizamide 梯度液或用溶液A （Nycodenz）（5.4 倍體積）稀釋iv 懸液，成為7.7％（W/V）Nycodenz 梯度液
l 制備8%~20%metrizamide 或7.7％～19.1％Nycodenz 連續(xù)線性梯度（用本講座中所用各種方法或利用Hitachi DGF-U）
l 用甩平轉(zhuǎn)頭，低溫，低速離心機，2,000g（約3,400~3,500rpm）×30 分鐘，4℃，
慢加速，慢減速。為了避免細(xì)胞聚集，總離心時間不要超過45 分鐘。
Vi． 結(jié)果分析
l 用DGF-U，上取法將每個離心管中溶液分部收集成25～30 管（每管0.3～0.5ml）
l 用阿貝折射儀測定各管的折射率（RI）并換算成密度
Nycodenz：密度（g/ml）=RI×3.242－3.323 metrizamide：密度（g/ml）= RI×3.453－3.601
l 用0.5％ Trypan 藍(lán)溶介在生理鹽水中與分部收集的細(xì)胞液混合，被染色的細(xì)胞為無活力細(xì)胞。
l 測定細(xì)胞數(shù)量并計算有活力的細(xì)胞百分比
l 用過氧化物酶染色反應(yīng)測定肝星形細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞及其他細(xì)胞的分布情況。
l 過氧化物染色反應(yīng)：
a：分別取每個分部收集液數(shù)滴（約5×105 各細(xì)胞）滴入2ml 細(xì)胞培養(yǎng)液
培養(yǎng)液：15mg DAB（Merck 公司產(chǎn)）溶于15ml 含7％（W/V）蔗糖的0.05M Tris－HCL(PH7.4 , 300 mOsm 中再加入10 30％H2O2，
注意：30 分鐘內(nèi)用完。
b：在培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)30 分鐘（也可以用恒溫水槽）
c：培養(yǎng)后低速離心300g×3 分鐘，去上清沉淀用200μl GBSS 稀釋
d：用血細(xì)胞計數(shù)器測定染色細(xì)胞數(shù)量：紅細(xì)胞被染后呈黑色，而肝星形細(xì)胞（Kupffer）
呈深褐色，由于它們大小不同，顏色也可分辨，在計數(shù)器上很容易鑒別。內(nèi)皮細(xì)胞和
淋巴西哦保保持染色前原色。
e：結(jié)果可以繪成下圖從圖可以看出：
l Kupffer 細(xì)胞在第10 管中占20％，只占總的Kupffer 細(xì)胞的一小部分。在第12～14
管中內(nèi)皮細(xì)胞占50％。
l 從結(jié)果分析，用這種等密度離心法還不能完全純化Kupffer 及endothelial 細(xì)胞，而
只能用于一般實驗需要。
例4：肝細(xì)胞的不連續(xù)密度梯度分離
這種方法適用于從肝竇狀細(xì)胞（Sinusoidal）中除去紅細(xì)胞和主質(zhì)細(xì)胞（parenchymal）,離心結(jié)果是讓紅細(xì)胞沉淀，內(nèi)皮細(xì)胞（Sinusoidal）浮上。
實驗需要的基本設(shè)備和溶劑：
l 一臺帶甩平轉(zhuǎn)頭的低速、低溫離心機；
l GBSS；
l 在無NaCl的GBSS中的28.7% Nycodenz或 30% metrizamide
l 15ml塑料離心管；
l 竇狀（Sinusoidal）肝細(xì)胞；
l Trypan藍(lán)染色劑；
l 過氧化物酶染色劑，及染色需要的設(shè)備；
l 生理鹽水（0.9% NaCl）；
l 固定液：2.5%戊二醛在0.1M二甲基胂酸鈉中（PH7.4）（二甲基胂酸鈉有劇毒，可用0.1M磷酸鹽代替）
l 培養(yǎng)液：（在通風(fēng)柜或生物安全柜中配置）
9.5ml 1.0M NaCl；
11mg 1-乙酸萘脂在0.5ml乙基乙二醇-乙醚中（在氮氣中保存）；
0.5ml 1.0M NaCl；
0.25ml 4% 品紅在2.0M HCL中，0.25ml 4% 硝酸鈉在純水中，共計0.5ml混合；
把以上混合液調(diào)節(jié)到PH7.4，纖維紙過濾后待用；
注意：30分鐘內(nèi)用完！
離心方法：
i. 準(zhǔn)備10ml Sinusoidal肝細(xì)胞在GBSS中懸液（1～4×108個細(xì)胞）；
ii. 在懸液中加14ml28.7%（W/V）Nycodenz 或30%（W/V）metrizamide 輕輕混勻；
iii. 將以上溶液分別注入二個離心管，并在每管液面上緩鋪1-2ml GBSS；
iv. 離心：400gx15分，室溫，不用剎車，自由滑行減速至停轉(zhuǎn)；
v. 從GBSS 與梯度液之間慢慢地抽吸Sinusoidal 細(xì)胞
vi. 用例2 同樣的方法測定細(xì)胞數(shù)量和活力。
vii. 酯酶染色反應(yīng)
l 數(shù)滴細(xì)胞懸液（～0.5×106 個細(xì)胞）滴入1～2ml 固定液，4℃，7 分鐘
l 700g×3 分，低速離心后，去上清，沉淀用0.9％Nacl“洗”二次（在離心機中，700g×3
分“洗”2 次）
l 取“洗”后沉淀與200μl 0.9％ Nacl 作成懸液，加入等容積培養(yǎng)液，37℃培養(yǎng)染色10 分
鐘
l 用血球計數(shù)器測定染色百分比：Kupffer, endothelial 及Parenchymal 細(xì)胞染成紅色，紅
細(xì)胞及淋巴細(xì)胞不被染色，儲脂細(xì)胞微染。
l 結(jié)果可用下表表示
|
項目 |
Nycodenz |
metrizamide | |
|
細(xì)胞產(chǎn)率 |
43×106 |
44×106 | |
|
細(xì)胞活力 |
99% |
99% | |
|
細(xì)胞化學(xué)染色 |
過氧化物酶染 |
17% |
27% |
|
酯酶染 |
71% |
80% | |
|
細(xì)胞組成： |
Kupffer |
16% |
26% |
|
endothelial |
54% |
54% | |
|
儲脂細(xì)胞 |
10% |
1% | |
|
紅細(xì)胞 |
1% |
1% | |
|
主質(zhì)細(xì)胞 |
1% |
1% | |
|
其他細(xì)胞（如淋巴細(xì)胞） |
18% |
18% | |
例5：用雙階梯不連續(xù)梯度部分純化儲脂細(xì)胞，需要的設(shè)備和化學(xué)試劑同例3。
i. 從一只成年雌鼠取肝制成Sinusoidal 細(xì)胞懸液（1～4×108 個細(xì)胞在12ml GBSS 中）
ii. 以6 倍容積的28.7％（W/V）Nycodenz 或30％（W/V）metrizamide 配以4 倍容積的
GBSS 來稀釋梯度液。取二個離心管（15ml），每管注入5ml 已稀釋的梯度液（17.2％
Nycodenz 或18％metrizamide）
iii. 將8ml 未稀釋的梯度原液與12ml 細(xì)胞懸液i 輕輕混合，混合后溶液中梯度液濃度為
11.5％Nycodenz 或12％metrizamide
iv. 每個離心管液柱上鋪5ml 已稀釋的細(xì)胞懸液與梯度液（iii 液），再在液面上鋪1～2ml
GBSS 形成雙階梯不連續(xù)密度梯度。
v. 低速離心1400g（2,700~2,800rpm）×17 分，20℃，無剎車，自由滑行至停轉(zhuǎn)。
vi. 用吸管從二個離心管的低密度界面及高密度界面上分別抽出細(xì)胞層。
vii. 用與例3 同樣的方法測定細(xì)胞產(chǎn)率、活力及組成并作成下表：
|
細(xì)胞名稱 |
|
細(xì)胞組成 |
| |
|
低密度片斷 |
|
高密度片斷 |
| |
|
|
細(xì)胞數(shù)量（×106） |
％ |
細(xì)胞數(shù)量（×106） |
％ |
|
儲脂細(xì)胞 |
52.5 |
79.6 |
0.9 |
0.4 |
|
Kupffer |
0.7 |
1.0 |
45.5 |
20.3 |
|
endothelial |
10.9 |
16.6 |
129.7 |
57.9 |
|
其他細(xì)胞（如淋巴細(xì)胞） |
1.9 |
2.8 |
47.9 |
21.4 |
|
總計 |
66 |
100 |
224.0 |
100 |
（三）用沉降速度法分離細(xì)胞：
利用重力沉降（1g），或低速速率－區(qū)帶密度梯度離心（＜1000×g）也可以純化各
種細(xì)胞。
下面舉一些分離實例來說明這種方法。主要方法取自參考文獻(xiàn)5，11，12，
用沉降速度法分離細(xì)胞舉例
下面舉一些分離實例來說明這種方法。主要方法取自參考文獻(xiàn)5，11，12，
用沉降速度法分離細(xì)胞舉例
|
細(xì)胞樣品 |
被分離細(xì)胞類型 |
梯度 |
離心時間
/RCF( × g) |
設(shè)備 |
結(jié)果 |
|
文
獻(xiàn) | |
|
純度 |
產(chǎn)率 |
活力 | ||||||
|
白血球 |
淋巴細(xì)胞（a） 單核細(xì)胞（b） |
BSA(1.5~6.5%) |
9 分/20× g |
特制離心室 |
a) ＞ 90％ b) ～ 90
％ |
a)90％ b)67％ |
99% |
5 |
|
白血球 |
淋巴細(xì)胞（a）
單核細(xì)胞（b） |
Ficoll（2～4％） |
2 小時/1g |
重力沉
降室 |
a) －
b)69 ～
77％ |
a) －
b) 28％ |
＞98
％ |
12 |
|
白血球 |
淋巴細(xì)胞（a） 單核細(xì)胞（b） |
Ficoll （ 3.4 ～ 16.9％） |
45 分/800 ×g |
低速區(qū)帶轉(zhuǎn)頭 |
/ |
/ |
/ |
12 |
|
預(yù)處理白血球 |
淋巴細(xì)胞（a） 嗜堿性細(xì)胞（b） |
Ficoll（4.5～9.5 ％） |
15 分/85 ×g |
甩平轉(zhuǎn)頭100ml 離心管 |
a) ＞ 95％ b)62 ～ 72％ |
a) ＞ 90％ b)30 ～ 50％ |
/ |
11 |
|
人骨髓細(xì)胞 |
CFU-C |
Ficoll（2～4％） |
2h/1g |
重力沉降室 |
/ |
/ |
/ |
/ |
|
預(yù)處理的犬胃
細(xì)胞 |
壁細(xì)胞（a）
主細(xì)胞（b） |
Ficoll（2～4％） |
50 分/1g |
重力沉
降室 |
a) ＞
60％
b) 85％ |
a) ～
50％
b) ～
30％ |
/ |
12 |
|
竇狀肝細(xì)胞 |
Kupffer（a）
Endothelial（b） |
Percoll
(3.5~18%) |
8 分/16g |
特殊沉降室 |
a) 98％
b) 97％ |
a) 68％
b) 86％ |
＞95
％ |
5 |
|
| ||||||||
（四）細(xì)胞的離心浮選：
利用離心浮選法分離細(xì)胞最初是在1948 年由Lindahl 提出的，當(dāng)時取名為“逆流離心” （文獻(xiàn)12）。這個設(shè)想在上世紀(jì)60 年代中期由Beckman 公司研發(fā)成為商用浮選轉(zhuǎn)頭和浮選離心系統(tǒng)，經(jīng)過逐步改進(jìn)發(fā)展成目前的JE－6B（5ml,3,470×g）及JE-5.0(40ML,4,700×g) 和Hitachi 的R5E（40ml，5,000rpm ）細(xì)胞浮選系統(tǒng)�，F(xiàn)代的浮選分離可以用光學(xué)系統(tǒng)直接在TV 顯示屏上觀察離心浮選過程（透明錐形離心室）。
離心浮選法特點：
l 利用細(xì)胞懸浮在錐形離心室內(nèi)受到的離心力，流體阻力和浮力的平衡關(guān)系實現(xiàn)不同
種類細(xì)胞的純化，純度很高。
l 不需要密度梯度；
l 適合分離純化直徑在5～50μm 的細(xì)胞；
l 收集細(xì)胞的數(shù)量可達(dá)107 ～1012 個（JE－5.0 或R5E）；
l 通過光學(xué)系統(tǒng)可以觀測浮選過程；
l 可以實現(xiàn)自動收集已純化的細(xì)胞；
l R5E在離心機門上有照相機，記錄浮選過程；
l 離心浮選室可以高溫消毒（121℃,20分）
離心浮選系統(tǒng)組成：
l Hitachi或Beckman高速冷凍離心機；
l 離心浮選轉(zhuǎn)頭（日立R5E或貝克曼JE-5.0）；
l 環(huán)氧樹脂透明離心室；
l 帶流量計、蠕動泵及加樣分配閥的加樣系統(tǒng)；
l 浮選轉(zhuǎn)頭專用觀察門蓋；
l 可以實現(xiàn)自動收集已純化的細(xì)胞；
l 光源組件（裝在轉(zhuǎn)頭下方）；
l TV顯示系統(tǒng).
例6 肝主質(zhì)細(xì)胞倍體級分離（文獻(xiàn)13）
l 所需設(shè)備同上述。
l 干細(xì)胞浮選用介質(zhì)：L-glutamine(131mg/l),L-aspartic acid(13.3mg/l),
L-threonine(23.8mg/l), L-serine(31.5mg/l), glycine(37.6mg/l), L-alanine(53.5mg/l),
L-glutamic acid(132.4mg/l), KCL(223.7mg/l), NaH2PO4·H2O(96.6mg/l),MgCl2·6H2O
(101.7mg/l), NaHCO3(2.01g/l), glucose(3.60g/l), fructose(3.60g/l),
Sucrose(67.4mg/l).溶液調(diào)節(jié)到PH7.4，滲透壓：308mOsm，配置后儲存在－20℃待用。
l 肝主質(zhì)細(xì)胞懸液，從三月齡雌性WAG/Rij 鼠取出；
l trypan 藍(lán)染色劑。
l 結(jié)果：各種倍體細(xì)胞分布
|
二倍體（2n） |
四倍體（4n） |
八倍體（8n） |
16 倍體（16n） | |||
|
單核 |
雙核 |
單核 |
雙核 |
單核 |
雙核 |
/ |
|
9％ |
16％ |
53％ |
16％ |
4％ |
2％ | |
例7 鼠肝主質(zhì)細(xì)胞的多倍體級浮選分離
l 設(shè)備及樣品：同例（5）
l 轉(zhuǎn)速1350rpm（～210g）
l 溫度4℃
l 初始充樣流速12ml/min，直至細(xì)胞充滿離心室
l 分別用流速19，32，41（ml/min）收集I,II,III 細(xì)胞，收集量分別為100ml，150ml 及100ml
l 已收集細(xì)胞儲存于4℃
l 停止輸液后轉(zhuǎn)頭停轉(zhuǎn)，從離心室收集沉淀并收集混合室樣品
l 用低速低溫離心機甩平轉(zhuǎn)頭分別將收集液離心沉淀，1000×g，10 分鐘，將沉淀與3ml 浮選介質(zhì)混合制成倍體細(xì)胞懸液，4℃保存。
l 結(jié)果：細(xì)胞數(shù)量與活性分析
|
成分 |
流量ml/min |
細(xì)胞數(shù)量×106 |
活性（％） |
組成 |
|
原液 |
|
137.8 |
84 |
2n，4n，8n，16n 及少量細(xì)胞聚集團(tuán)及細(xì)胞碎片 |
|
I |
19 |
39.8 |
72 |
2n，4n, 少量細(xì)胞碎片 |
|
II |
32 |
54.7 |
85 |
4n（90％） |
|
III |
41 |
15.5 |
83 |
4n，8n，細(xì)胞聚集團(tuán) |
|
沉淀 |
|
17.1 |
82 |
同原液數(shù)據(jù) |
|
混合室 |
|
5.2 |
85 |
同原液數(shù)據(jù) |
|
總數(shù) |
|
127.0（92％） |
|
|
例8 肝的Kupffer （星形細(xì)胞）及endothelial( 內(nèi)皮)細(xì)胞純化
l 浮選設(shè)備：同上述例
l 浮選用介質(zhì)：GBSS
l 各種染色介質(zhì)（參考各節(jié)）
l 肝竇狀細(xì)胞（Sinusoidal）懸液
l 分離步驟
|
i. |
用不連續(xù)Nycodenz 梯度制備鼠肝Sinusoidal 細(xì)胞懸液（參見本文前例） |
|
ii. |
安裝離心浮選系統(tǒng)（Hitachi 或Beckman） |
|
iii. |
標(biāo)準(zhǔn)離心室：3,250rpm，4℃ |
|
iv. |
初始流量13.5ml/min 注入1～5×108個細(xì)胞懸液 |
|
v. |
在流量分別為18，32，48ml/min 時分別收集100ml，150ml，150ml |
|
|
收集液中含有白細(xì)胞（L）、星形細(xì)胞（K）、內(nèi)皮細(xì)胞（E）及主質(zhì)細(xì)胞（P），收集 |
|
|
液保存在4℃。 |
|
vi. |
離心后收集在浮選室中的細(xì)胞 |
|
vii. |
各種收集液離心沉淀：450g×10 分，沉淀分別混懸于3mlGBSS 中 |
viii. 結(jié)果如下表：
|
成份 |
細(xì)胞主要類型 |
細(xì)胞總量×106 |
活性 |
染色細(xì)胞比例％ |
組成％ |
| |||
|
|
|
|
％ |
P1 |
E1 |
P |
L |
E |
K |
|
初始細(xì)胞液 |
Sinusoidal |
167.4 |
87 |
24.7 |
86.8 |
0.6 |
13.2 |
61.5 |
24.7 |
|
I 收集液（100ml） |
L |
19.9 |
80 |
3.0 |
28.6 |
/ |
71.4 |
25.6 |
3 |
|
II 收集液（150ml） |
E |
82.5 |
95 |
9.0 |
89.2 |
/ |
10.8 |
80.2 |
9 |
|
III 收集液（150ml） |
K |
34.7 |
97 |
83.5 |
95.1 |
/ |
4.9 |
11.6 |
83.5 |
|
沉淀 |
細(xì)胞聚集團(tuán) |
9.8 |
95 |
34.5 |
96 |
16.0 |
4.0 |
44.6 |
35.4 |
注：
l 表成染色比例中 P1：Peroxidase 過氧化物，E1：Esterrase（酯酶）
l Sinusoidal 細(xì)胞制備方法參見前述內(nèi)容。
例9 鼠肝儲脂細(xì)胞的離心浮選純化（文獻(xiàn)14）
|
i. |
離心浮選設(shè)備（同上） |
|
ii. |
轉(zhuǎn)速3,250rpm，4℃，流量16ml/min |
|
iii. |
Sinusoidal 細(xì)胞制備參照前述二階不連續(xù)梯度離心法。 |
|
iv. |
加樣：5～50×107 個細(xì)胞注入混合室 |
|
v. |
用16ml/min 及18ml/min 分別收集二次，最后收集在離心室中剩下的細(xì)胞液 |
|
vi. |
以上三種收集液分別450g×10 分鐘離心，收集沉淀后分別用2mlGBSS 混成 |
|
|
懸液 |
結(jié)果如下表：
|
成份 |
細(xì)胞主要類型 |
細(xì)胞總量×106 |
活性％ |
染色細(xì)胞比例％ |
|
組成％ |
| ||
|
|
|
|
|
P |
E1 |
F |
L |
E |
K |
|
初始樣品 |
E.F |
133 |
94 |
8 |
98 |
16 |
2 |
75 |
8 |
|
F1 |
F |
14 |
80 |
1 |
88 |
78 |
12 |
9 |
/ |
|
F2 |
F |
6 |
85 |
1 |
94 |
53 |
6 |
40 |
/ |
|
沉淀 |
E |
108 |
93 |
1 |
99 |
7 |
/ |
81 |
11 |
注：①E：endothelal Cell ②初始樣品取12 月齡鼠肝，二步不連續(xù)梯度分離后取上層
F：Fat-storing Cell
P1：Peroxidase
E1：Esterrase
L：Lymphocytes
K：Kupffer
例10 用離心浮選法從人血中純化單核白細(xì)胞
l 離心浮選設(shè)備同上述
l 浮選前、后處理需要低速低溫離心機50ml 甩平轉(zhuǎn)頭
l 浮選用液：含25mM 葡萄糖及1％（W/V）BSA 的磷酸緩沖液
l 酯酶（Esterrase）染色所需設(shè)備及試劑
l 肝素化（利用肝素增加血液凝固時間）人血（50ml）
l 梯度材料Ficoll-Pague (Pharmacia-Biosystems)
Lymphoprep (Nycomed Pharma，A/S)
l 磷酸鹽緩沖液（PBS）（50mM，PH7.4）
分離步驟：
|
i. |
用例（1） 的方法從50ml 血樣中純化單核細(xì)胞，從分界面收獲細(xì)胞液， 加浮選 |
|
|
液后容積為5ml 。 |
|
ii. |
安裝離心浮選系統(tǒng)，用浮選液充滿浮選離心室，設(shè)置5℃。 |
|
iii. |
預(yù)置轉(zhuǎn)速2,030rpm, 設(shè)定流量4.7ml/min |
|
iv. |
加入樣品（1×108 個細(xì)胞）， 離心，分九次收集，每次50ml 分別用流量4.7，8.0， |
|
|
10.0，11.0，12.0，12.7，13.5，14.5，16ml/min 收集。 |
|
v. |
收集后的細(xì)胞樣品分別用450g×10 分收集沉淀。 |
|
vi. |
將以上沉淀分別用3ml 浮選液稀釋成懸液 |
|
vii. |
Esterrase 染色后計數(shù) |
|
|
結(jié)果如下表： |
|
成份 |
流量（ml/min） |
細(xì)胞數(shù)量（×106） |
酯酶染色 | |
|
負(fù)染（％） |
正染（％） | |||
|
原液 |
/ |
104 |
85.6 |
14.4 |
|
1 |
4.7 |
0 |
/ |
/ |
|
2 |
8.0 |
3 |
100 |
0 |
|
3 |
10.0 |
17.8 |
99.7 |
0.3 |
|
4 |
11.0 |
25.0 |
99.3 |
0.7 |
|
5 |
12.0 |
25.0 |
98.0 |
2.0 |
|
6 |
12.7 |
10.8 |
95.2 |
4.8 |
|
7 |
13.5 |
1.2 |
95.3 |
4.7 |
|
8 |
14.5 |
0.8 |
84.5 |
15.5 |
|
9 |
16 |
2.0 |
58.7 |
41.3 |
|
沉淀 |
/ |
10.0 |
28.4 |
71.6 |
參考文獻(xiàn)：
1 ：“Bruwer，A“等“Centrifugal Separations of mammalian calls”in“Centrifugation-a Practical
approach”PP271～314 OXFORD Uni.press，1992.
2：“B∮yun , A.”“Scand. J. Clin. Inrest. Vol. 21 (Suppl. 97) P. 77”
3：Wisse，E.等“Progress in liver diseases”Vol：Ⅵ P153，Grune and Stratton，Inc.1979)
4：“B∮yun , A. 等” “Iodinated density gradient media：a practical approach, Oxford Uni.IRL Press 1984
5：Tulp.A. 等 Anal.Biochem.Vol.117 P354 (1981)
6：Brouwer,A 等人“Sinusoidal liver cells” P509，Elsevier Biomedical press .Amsterdam, 1982
7：Pertoft, H 等“Cell Separation：methods and selected applications”Vol 1，P41 Academic press. New York 1982
approach”PP271～314 OXFORD Uni.press，1992.
2：“B∮yun , A.”“Scand. J. Clin. Inrest. Vol. 21 (Suppl. 97) P. 77”
3：Wisse，E.等“Progress in liver diseases”Vol：Ⅵ P153，Grune and Stratton，Inc.1979)
4：“B∮yun , A. 等” “Iodinated density gradient media：a practical approach, Oxford Uni.IRL Press 1984
5：Tulp.A. 等 Anal.Biochem.Vol.117 P354 (1981)
6：Brouwer,A 等人“Sinusoidal liver cells” P509，Elsevier Biomedical press .Amsterdam, 1982
7：Pertoft, H 等“Cell Separation：methods and selected applications”Vol 1，P41 Academic press. New York 1982
8：Remenyik，C.J. 等Arch. Biochem. Biophys.Vol:201 P500
9：B∮yun , A.“Scand .J.Clin.Invest.Vd:21, P77
10：Knook, D. L. 等“Exp. Cell Res. Vol:99, P444
11：MacGlashan, D.W 等“Cell Separation：Methods and Selected application ”Vol：1 P301 Academic Press. New York 1982
12：Wells, J.R. 同上書P169
13：Bezooijen C.F.A 等“Pharmacological morphological and Phisiological Aspects of liver aging” Vol:1 P115(1984)
14：Knock，D,L 等“Exp 。Cell Res. Vol:139 P468 (1982)
作者：余興明 電話：13764301893,
標(biāo)簽：
速率－區(qū)帶密度梯度離心、等密度離心、細(xì)胞浮選離心
- 篤行致遠(yuǎn)-IKA第十六屆大中華區(qū)經(jīng)銷商大會圓滿落幕
- 德國IKA將攜生命科學(xué)解決方案與您相約CPHI CHINA
- 赫西參與湖南儀器協(xié)會乳品離心機等4項標(biāo)準(zhǔn)制定推進(jìn)
- IKA邀您參加易貿(mào)產(chǎn)業(yè)大會,現(xiàn)場有VR體驗和禮品抽獎
- IKA 獎學(xué)金在清華大學(xué)基礎(chǔ)分子科學(xué)中心年會上頒發(fā)
- 讓離心更環(huán)保高效，Eppendorf 發(fā)布5427 R冷凍離心機
- 赫西將攜離心機、濃縮儀參展藥品質(zhì)量控制與檢驗大會
- 盧湘儀TD-SZ地表水總磷檢測離心機亮相BCEIA 2023
Copyright(C) 1998-2024 生物器材網(wǎng) 電話：021-64166852;13621656896 E-mail：info@bio-equip.com