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蛋白質(zhì)組學技術(shù)分析方法及其儀器使用比較

瀏覽次數(shù):4611 發(fā)布日期:2011-6-8  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負
蛋白質(zhì)組學技術(shù)分析方法及其儀器使用比較
 
1 蛋白質(zhì)組學概述
 
“蛋白質(zhì)組”一詞的英文是Proteome,它是proteins 和genome 兩個詞的組合,意思是proteins expressed by a genome,即為基因組表達的蛋白質(zhì)[1]。蛋白質(zhì)組的概念是1994 年由Wilkins首先提出,并首次在1995 年7月的“Electrophoresis”上發(fā)表,指“一個細胞或一種組織基因組所表達的全部蛋白質(zhì)”[2], 蛋白質(zhì)組學(proteomics) 是從整體水平上研究細胞內(nèi)蛋白質(zhì)的組成及其活動規(guī)律。與基因固定不變的基因組不同,蛋白質(zhì)組作為相應(yīng)基因組所表達的產(chǎn)物隨時間、地點、環(huán)境等條件變化。在同一機體不同的組織和不同細胞中、蛋白質(zhì)的種類、數(shù)量不同; 即使同一組織或細胞在不同的發(fā)育階段、生理狀態(tài)、甚至不同的外界環(huán)境下,其蛋白質(zhì)組也是在不斷的變化之中; 在病理或治療過程中, 與正常生理過程也不同。因此, 蛋白質(zhì)組是一個動態(tài)的概念。其目的是從整體的角度分析機體內(nèi)動態(tài)變化的蛋白質(zhì)組成成分、表達水平、修飾狀態(tài),了解蛋白質(zhì)之間的相互作用和聯(lián)系, 揭示蛋白質(zhì)功能與生命活動的規(guī)律。蛋白質(zhì)組學的研究分為3 方面: (1) 蛋白質(zhì)大規(guī)模鑒定和轉(zhuǎn)錄后修飾的微特征研究。(2) 差異顯示蛋白質(zhì)組學,即蛋白質(zhì)表達水平的研究, 對腫瘤等疾病的應(yīng)用有著廣闊的前景。(3) 蛋白質(zhì)間相互作用和翻譯后修飾的研究[3]。分析不同蛋白質(zhì)的表達可用來比較正常組織和腫瘤組織之間的差別,蛋白組學將成為鑒別疾病的標記物,可以闡述某種機制,這種機制在越來越多的分析中被應(yīng)用。人類的基因組比預(yù)期要小的多,并且基因組計劃中的腫瘤相關(guān)基因現(xiàn)在才被知道,然而較小的基因不能反映單一的蛋白質(zhì)組。通常,廣泛的翻譯后修飾例如磷酸化、糖基化,蛋白水解處理作用都是很常見的方式。蛋白質(zhì)翻譯后修飾能夠顯著地改變蛋白質(zhì)的功能,因此可以表達出細胞和組織特征。因此,在基因組中,蛋白組學的挑戰(zhàn)之一就是通過蛋白效應(yīng)器的知識理解組織特征,并且把它應(yīng)用到臨床中。
 
2蛋白質(zhì)組學分析方法
 
蛋白質(zhì)組學可以利用蛋白微數(shù)列、電泳和質(zhì)譜分析法檢測、識別和特征標記的蛋白進行分析。這些方法有其獨特的優(yōu)點和局限性,根據(jù)各自能力評估蛋白質(zhì)組譜。
2.1蛋白微數(shù)列技術(shù)
蛋白微數(shù)列是將大量抗體或者大量組織蛋白質(zhì)樣品一次標記在載玻片上進行檢測分析。這種方法能夠檢測大量蛋白質(zhì)的存在或者大量組織樣本表達的水平,但是這種技術(shù)在特異性和敏感性抗體的可用性方面是有限的。此外抗體的特異性必須通過免疫印跡證實,并且需要內(nèi)部的對照,尤其是抗體的微數(shù)列沒有預(yù)測的親和力和特異性。盡管如此,大量商品化抗體的應(yīng)用使得應(yīng)用蛋白微數(shù)列成為可能。
2.2 雙向凝膠電泳
雙向電泳在1975年由O’Farrell發(fā)明,其原理是:第一向基于蛋白質(zhì)的等電點不同,用等電聚焦分離.第二向則按分子質(zhì)量的不同用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠把復雜蛋白混合物中的蛋白質(zhì)在二維平面上分離,這種方法尤其適用于分子量相似的蛋白質(zhì)。采用蛋白質(zhì)組重疊群 , 即利用多個不同pH梯度和分子量上相互重疊的2-DE 圖譜, 拼接成一張完整2-DE 圖譜, 大大提高了分辨率和進樣量, 這對于低豐度蛋白的檢出十分有利。個別蛋白質(zhì)可以被染色水解為肽,這些可以通過質(zhì)譜分析法進行分析。肽的酶解圖譜可以根據(jù)蛋白質(zhì)的數(shù)據(jù)庫進行分析。
2.3 質(zhì)譜分析法
蛋白組學主要的工具之一就是質(zhì)譜分析法。這種方法是將基因轉(zhuǎn)變成氣體離子后,根據(jù)投料比例分析蛋白質(zhì)。吸解作用和離子化技術(shù)例如基質(zhì)輔助的激光解吸離子化技術(shù),為檢測和分辨蛋白質(zhì)提供了高水平的敏感度和精確度,這種技術(shù)的高敏感度和樣品的簡化使得這項技術(shù)便利化,但是它也存在局限性。分析復雜的樣品例如血清相比檢測蛋白困難大的多。
 
3 蛋白組學的分析儀器比較

方法
原理
優(yōu)點
缺點
 
 
 
電泳
 
水溶性的蛋白根據(jù)電場的原理從負極向正級移動,移動的速率取決與其電荷、大小和形狀。
 
蛋白被識別之前凝膠劑肯定被染色,凝膠劑染色本身沒有用處,如果沒有另一種檢測技術(shù)的使用,諸如免疫印跡或者質(zhì)譜分析技術(shù),蛋白不能被精確地鑒別。
 
 
 
 
 
SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝膠電泳
 
 
 
蛋白質(zhì)移行通過惰性聚丙烯酰胺凝膠,孔徑大小的可調(diào)節(jié)性可阻止蛋白,SDS是負電荷的洗滌劑,它可以展開蛋白質(zhì)的分子鏈,成為游離的分子,蛋白質(zhì)以不同的速率向正極移行。
 
 
 
 
分離所有類型的蛋白質(zhì),甚至那些非水溶性的蛋白質(zhì)。
 
 
 
一維分離方法分離是有限的。接近傾向重疊,僅能解決小分子量的蛋白質(zhì)。
 
 
 
 
二維凝膠電泳
 
 
第 1 相電泳是根據(jù)蛋白質(zhì)的等電點不同在p H 梯度膠中進行等電聚焦電泳。第 2 相電泳根據(jù)蛋白質(zhì)等電聚焦的原理,根據(jù)蛋白質(zhì)分子量的大小在凝 膠 電 泳 ( SDS-PAGE)進行蛋白質(zhì)分離 。
 
同多種蛋白凝膠電泳相比,這種方法分離混合物分辨率高,根據(jù)圖像分析比較便利,蛋白質(zhì)分解的大約每毫升1ng。
高豐度蛋白存在可能是模糊的(例如白蛋白、免疫球蛋白)低豐度蛋白的分離蛋白質(zhì)需要從凝膠中移除斑點,消化,利用質(zhì)譜分析法分析肽,它不能分辨小分子重的蛋白質(zhì)(<10,000 Da)。不能順從多變的分析。
 
 
 
 
 
 
二維熒光差異凝膠電泳
 
 
二維電泳使用不同的青藍燃料從不同的樣品中標記蛋白,在不同的光的波長發(fā)生酶倍增免疫測定技術(shù),混合樣品中達到三種的樣品能夠被標記(測試、對照、參考)
從混合物中分析不同的蛋白質(zhì)這種方法很簡單,在單一的凝膠中可以得到蛋白質(zhì)表達的速率,在每一個凝膠或者是不同凝膠之間變化的復位由一個內(nèi)部的標準,非常敏感。
高豐度蛋白存在可能是模糊的(例如白蛋白、免疫球蛋白)低豐度蛋白分離蛋白質(zhì)最終需要從凝膠中移除斑點,消化,利用質(zhì)譜分析法分析肽,許多斑點不能辨別,因為材料的缺乏,它不能分辨小分子重的蛋白質(zhì)(<10,000 Da)。
 
蛋白質(zhì)芯片多種蛋白質(zhì)的芯片、細胞因子芯片、組織微數(shù)列
已知的蛋白質(zhì)局限到一個表面(念珠、硝酸纖維素),利用免疫測定的原理檢測。
高敏感率和處理量,多種分析物可以同時測定。
有限抗體的有效性和特異性需要一些先前蛋白質(zhì)表達的知識?赡懿荒軝z測分析亞型。
 
 
 
 
 
 
基質(zhì)輔助的激光解吸離子化-飛行時間-質(zhì)譜技術(shù)
 
 
 
決定蛋白質(zhì)或者肽片段的精確積聚。蛋白質(zhì)或肽片段是由有機酸間質(zhì)混合而成的,在金屬載玻片上干燥,激光離子化破壞肽類片段, 這可以使得在電場中向檢測器方向移動。到達檢測器的時間取決于電荷和形狀。通過質(zhì)譜分析技術(shù)可以獲得肽類的遺傳信息。
 
最大的測定分子量<3000Da
 
 
 
 
 
蛋白質(zhì)芯片表面增強激光解析電離-飛行時間-質(zhì)譜技術(shù)
 
 
與基質(zhì)輔助的激光解吸離子化-飛行時間-質(zhì)譜技術(shù)比較,不同點在于它使用了色譜技術(shù),從復雜試樣中,有選擇的結(jié)合蛋白質(zhì)亞型。
沖洗移去表面非特異性凝結(jié)蛋白質(zhì)和其他物質(zhì),這些物質(zhì)可以干擾離子化的進程。(鹽,去污劑等)
 
 
 
 
高流通量病毒免疫測定自動化;樣本量最;初步分離原材料可以增強低豐度蛋白的檢出率。
 
不能直接辨別蛋白質(zhì)。對高分子量蛋白質(zhì)(分子量>20 kDa)不敏感。
 
 
 
 
穩(wěn)定同位素標記
 
 
生物樣本使用不同的穩(wěn)定同位素,這些同位素使用變調(diào)劑靶向于一種特異性的氨基酸。介于分離和質(zhì)譜分析法之后,兩個不同樣本的肽在不同質(zhì)量單位的特異同位素中使用,能獲得相對量化。
 
 
蛋白組學比其他方法普及。在大量的蛋白質(zhì)中能獲得度量信息。通常能獲得相關(guān)蛋白的識別數(shù)據(jù)信號。
高技術(shù)要求,低處理能力。樣本在檢驗前需經(jīng)過胰蛋白酶處理。這種可靠的方法適合于檢測大量蛋白質(zhì)。


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