近年來,隨著生物藥市場和基因工程技術(shù)的發(fā)展,重組治療性抗體或者單抗的需求在生物藥中的比例也逐年上升。重組mAbs被應(yīng)用于包括癌癥及免疫系統(tǒng)缺陷在內(nèi)的許多疾病的治療當(dāng)中。
重組mAbs通過基因工程技術(shù)改造后可以在多種宿主細胞表達。重組mAbs在表達后進行翻譯后修飾、蛋白質(zhì)折疊、組裝及適當(dāng)?shù)奶腔拍芫哂猩飳W(xué)活性。由于各種生物的特性不同,適合表達蛋白的種類也不相同,不同宿主產(chǎn)生的mAbs,其生物活性和免疫原性也都各不相同。
大腸桿菌(E.coli)表達系統(tǒng)
在各種表達系統(tǒng)中,最早被采用進行研究的是大腸桿菌(E.coli)表達系統(tǒng),其顯著的優(yōu)點是易于操作,產(chǎn)量高,成本低,但是由于用E.coli生產(chǎn)的蛋白在蛋白質(zhì)翻譯后缺乏加工機制,如二硫鍵的形成、蛋白糖基化和正確折疊,在人體內(nèi)易被降解,得到具有生物活性的蛋白的幾率較小。此外,E.coli還易產(chǎn)生內(nèi)毒素超標(biāo)和包涵體等問題。
哺乳動物細胞表達系統(tǒng)
目前所有哺乳動物細胞表達系統(tǒng)中,中國倉鼠卵巢(CHO)細胞應(yīng)用最為廣泛,由于其酷似人類的翻譯后修飾和內(nèi)在的蛋白質(zhì)折疊機制的優(yōu)點,是重組mAbs生產(chǎn)的首選平臺,占據(jù)了70%的重組mAbs生產(chǎn)制備,并且大部分為單克隆抗體。為了在早期治療性研究中得到毫克到克級的蛋白質(zhì),蛋白瞬時表達系統(tǒng)被廣泛應(yīng)用,目標(biāo)蛋白均可以在5-8周內(nèi)提供。這種快速的蛋白制備技術(shù)與穩(wěn)定細胞株構(gòu)架相比,大大縮短了研發(fā)周期,從而促進了生物治療藥物的研發(fā)進程。
根據(jù)目的蛋白表達的時空差異,可將哺乳動物細胞表達系統(tǒng)分為瞬時和穩(wěn)定表達系統(tǒng)。
1、瞬時表達系統(tǒng)是指以外源基因?qū)胨拗骷毎?轉(zhuǎn)染)為基礎(chǔ),在有限的時間內(nèi)表達的技術(shù)。轉(zhuǎn)染后,質(zhì)粒DNA分子留在細胞內(nèi),不整合到基因組中,最終隨著時間的推移和細胞分裂而丟失。在抗體上清收獲之前,抗體上清的制備生產(chǎn)通常限于轉(zhuǎn)染后7-14天,時間比較短暫。瞬時表達系統(tǒng)的優(yōu)勢是操作過程簡捷,實驗周期短。另一個顯著的優(yōu)勢是瞬時表達的靈活性。只有改變質(zhì)粒DNA中包含的目的基因,就可以表達幾種蛋白質(zhì),靈活性比較高。這些優(yōu)勢讓瞬時表達系統(tǒng)在抗體藥物早期的高通量篩選流程中承擔(dān)了很重要的角色。當(dāng)目的蛋白或者抗體由于毒性問題而不能讓細胞持續(xù)表達時,瞬時表達也是一種合適的選擇[1,2]。此外,瞬時表達可以從非常小的規(guī)模(96孔板)[3]擴大到大容量培養(yǎng)容器中(生物反應(yīng)器中的數(shù)百升)[4]。
圖1.瞬時轉(zhuǎn)染元件[5]
2、穩(wěn)定表達系統(tǒng)是指載體進入宿主細胞,經(jīng)過選擇加壓篩選培養(yǎng),載體DNA穩(wěn)定整合在細胞內(nèi),目的蛋白的表達持久、穩(wěn)定。由于需要抗性篩選、加壓擴增等步驟,穩(wěn)定表達相對實驗周期長,耗時耗力。
圖2.穩(wěn)轉(zhuǎn)細胞系構(gòu)建流程[6]
生物醫(yī)藥界“糖寶”-CHO
1957年美國科羅拉多大學(xué)的Puck教授從一成年雌性倉鼠卵巢分離獲得一種上皮貼壁型細胞,并建立了首批CHO細胞系,為命名為CHO-K1細胞系,是目前在生物領(lǐng)域中廣泛使用的細胞系[7]。,此后建立了許多不同的細胞系,如CHO-S、CHOK1SV、DG44等[8]。
圖3.CHO細胞發(fā)展[9]
1、CHO細胞的應(yīng)用優(yōu)勢
1. 具有清晰地歷史背景和監(jiān)管機構(gòu)的認可,安全性高;
2. 具有準(zhǔn)確的轉(zhuǎn)錄后修飾功能,表達的蛋白在分子結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)和生物學(xué)功能等方面最接近于天然蛋白分子;
3. 既可以貼壁生長,又可以懸浮培養(yǎng),并且具有較高的耐受剪切力和滲透壓的能力;
4. 具有重組基因的高效擴增和表達能力,外源蛋白整合穩(wěn)定;
5. 具有產(chǎn)物胞外分泌的功能,并且很少幾乎不分泌自身的內(nèi)源蛋白,便于下游產(chǎn)物的分離與純化;
6. 能以懸浮培養(yǎng)方式或者在無血清培養(yǎng)基中達到高密度培養(yǎng),可以大規(guī)模生產(chǎn)。
2、改善CHO細胞的表達水平
近年來,研究人員和細胞開發(fā)公司已經(jīng)開發(fā)了許多策略來改善CHO細胞表達水平。表達EBNA1蛋白或T抗原的CHO細胞系,其制備抗體的能力會得到增強。還有其它CHO細胞系基因工程策略,例如過表達未折疊蛋白應(yīng)答因子或敲除促凋亡基因,也可以顯著地增加CHO細胞的表達能力。表達工藝的優(yōu)化,如化學(xué)添加,溫度偏移,或更長的培養(yǎng)時間等方法,均可以增加其表達水平。
針對于轉(zhuǎn)染效率、生產(chǎn)力和生長特性,很多產(chǎn)品公司對CHO細胞進行改造及優(yōu)化,目前被應(yīng)用CHO-S細胞系,商品名為ExpiCHO-STM。ExpiCHO-S細胞經(jīng)懸浮培養(yǎng)后,呈最小的聚集趨勢,在表達培養(yǎng)基中呈高密度生長,能顯著提升瞬時表達的產(chǎn)量和效率。穩(wěn)定的細胞系表達能力,穩(wěn)定的產(chǎn)品質(zhì)量和較高的產(chǎn)率,CHO細胞表達系統(tǒng)已成為生物制藥工業(yè)中制備大量蛋白質(zhì)的首選方法。相信在不久的將來,有更多高質(zhì)量的重組mAb通過CHO細胞制備出來。
好啦好啦,今天的基礎(chǔ)小知識分享到此結(jié)束,祝大家周末愉快,咱們后會有期啦~~
參考資料:
[1] Nallet S, Amacker M, Westerfeld N, et al. Respiratory syncytial virus subunit vaccine based on a recombinant fusion protein expressed transiently in mammalian cells. Vaccine. 2009;27:6415–6419.
[2] Mignaqui AC, Ruiz V, Perret S, et al. Transient gene expression in serum-free suspension-growing mammalian cells for the production of foot-and-mouth disease virus empty capsids. PLoS One. 2013;8:1–9.
[3] Raymond C, Tom R, Perret S, et al. A simplified polyethylenimine-mediated transfection process for largescale and high-throughput applications. Methods. 2011;55:44–51.
[4] Tuvesson O, Uhe C, Rozkov A, et al. Development of a generic transient transfection process at 100 L scale. Cytotechnology. 2008;56:123–136.
[5] Gutiérrez-Granados S, Cervera L, Kamen AA, et al. Advancements in mammalian cell transient gene expression (TGE) technology for accelerated production of biologics. Crit Rev Biotechnol. 2018 Sep;38(6):918-940.
[6] Lai T1, Yang Y, Ng SK. Advances in Mammalian Cell Line Development Technologies for Recombinant Protein Production. Pharmaceuticals (Basel). 2013 Apr 26;6(5):579-603.
[7] PUCK TT. The genetics of somatic mammalian cells. Adv Biol Med Phys. 1957;5:75-101.
[8] Stolfa G1, Smonskey MT, Boniface R. CHO-Omics Review: The Impact of Current and Emerging Technologies on Chinese Hamster Ovary Based Bioproduction. Biotechnol J. 2018 Mar;13(3):e1700227.
[9] Lewis NE, Liu X, Li Y, et al. Genomic landscapes of Chinese hamster ovary cell lines as revealed by the Cricetulus griseus draft genome. Nat Biotechnol. 2013 Aug;31(8):759-65.
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