T細胞尼龍毛柱分離法的操作使用
瀏覽次數:3594 發(fā)布日期:2020-8-19
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在研究體內及體外的免疫系統時,分離淋巴細胞群是一個關鍵步驟。因為現在市場上并沒有針對B細胞的特異性抗血清,所以分離淋巴細胞中的T細胞并不是十分方便。
T細胞尼龍毛分離法利用了尼龍毛對B細胞的親和力,從而使T細胞在沒有嚴重損傷的情況下達到的足夠的純度。因為這個方法不像流式和磁珠費用昂貴,而且操作簡便,所需要的條件也不高,是一種非常實用的方法。
(在此我向各位解釋一下,現在分離T細胞的方法主要是三種,流式,磁珠法,尼龍毛法。與前兩種方法相比,尼龍毛法的優(yōu)勢在于無需特定的設備儀器,一般的實驗室均有條件操作;價格相對低廉;可以進行大量樣本操作。)
首先要指出的是實驗中所使用的是分離T細胞專用的尼龍毛(Nylon Fiber),不是化工上的尼龍纖維,曾經有人問過我這種問題,如果你買錯了,可是做不出來的!
其次,現在市面上的尼龍毛也是良雋不齊,也有同仁反應買到的尼龍毛加入緩沖液以后成了一團糨糊,根本沒法使用,這個問題就要靠各位的慧眼了。
現在市面上有尼龍毛填料,也已經有了商品化的尼龍毛柱子,這兩者的區(qū)別主要是以下兩點:
1. 商品化的柱子的填料量是已經定好的,有一個確定的上樣量范圍。而自己買填料裝柱可以控制填料量,也就是可以控制上樣量,這對于樣本量非常少,或是樣本量非常大的實驗需求非常合適。
2. 商品化的柱子已經經過了無菌處理(一般是輻射滅菌),而自己裝柱當然就要自己滅菌了。
3. 商品化的柱子在實驗的重復性上有著絕對的優(yōu)勢。自己裝的柱子在填料的處理和裝柱的松緊等方面不容易控制,差異性的控制就看你的實驗技巧了。
操作方法:
1.秤取1.5g尼龍毛裝入20-30ml玻璃或一次性注射器內(要可以滅菌的),填料的體積控制在15毫升左右(注射器上有標記,所以還是比較好控制的),因為尼龍毛的松緊關系到T細胞的回收率,
所以要特別注意。注射器下端配接5厘米左右長的帶有彈簧夾的橡皮管。
2. 加入大量的PBS平衡柱子后,用鋁箔包裹,并置于適當的容器內,高壓滅菌15分鐘。 (商品化尼龍毛柱以上步驟可以省略,經過無菌PBS平衡后直接進行下列步驟。)
3. 滅菌的尼龍毛柱垂直固定后放于超凈臺內,頂部以鋁箔覆蓋,避免污染。
4. 橡皮管,彈簧夾用wu水酒精消毒后接注射器下端,打開彈簧夾調節(jié)流速在大約3-4ml/min。
5.首先,加入3-4倍柱體的無血培養(yǎng)基平衡;隨后,之后加入相同體積的含有血清的培養(yǎng)基平衡(上述培養(yǎng)基都要預熱),最后等培養(yǎng)基頁面接近柱填料頁面時,關閉彈簧夾。
6. 樣本細胞懸浮液濃度控制在5×108cells/ml的,上樣量一般是1/3-1/5柱體積(商品化的柱子一般都有推薦上樣量)。樣品加入之后,再加入少量培養(yǎng)液,然后關閉彈簧夾。
7. 柱上覆蓋鋁箔,移置于消毒過的容器中,37℃孵育1小時。此過程中柱子必須要保持垂直狀態(tài)。
8. 從培養(yǎng)箱中拿出柱子,置于超凈臺內,除去鋁箔。接上按照4.中的方法消毒的彈簧夾和橡皮管,加入適當體積經37℃預熱的培養(yǎng)基,打開彈簧夾控制流速在3-4 mL/min,流出約5ml之后,流出的培養(yǎng)液基變得不透明,此時其中含有T細胞,收集這一部分培養(yǎng)基。
9. 基本上何時結束收集取決于流出液體中細胞的濃度,實際上,收集的量達到一個柱體積時就可以停止收集,因為即使收集更多的量,回收率幾乎不會增加。
10 。參考數據: 樣本:小鼠脾臟(T細胞含量在30-40%,B細胞含量在55-60%) 細胞回收率:13-25% B細胞污染率:小于15%
樣本:大鼠脾臟(T細胞含量在30-35%,B細胞含量在55-65%) 細胞回收率:大于25% B細胞污染率:小于15%
樣本:人或兔外周血 細胞回收率 : 20-30% (人);25-35% (兔) B細胞污染率:小于5% (人、兔)
(注)收集粘附于尼龍毛上的細胞時,將T細胞收集完畢后的尼龍毛在無菌操作的狀態(tài)下取出,轉移到適當的容器中,用鑷子小心的將尼龍毛松開,粘附的細胞可以洗到培養(yǎng)基中。
或者將注射器芯插入注射器內,通過壓力使的粘附的細胞隨著液體流出。