齊英姿
本次我們分享兩篇文章,分別于2022年09月和2022年10月發(fā)表于bioRxiv [1-2],文章內(nèi)容為在單細胞蛋白質(zhì)組學(xué)領(lǐng)域,使用基于PD3.0_CHIMERYS檢索及質(zhì)譜寬隔離窗口采集的方法,搭配全新的μPAC 色譜柱的賽默飛綜合解決方案,提升單細胞蛋白質(zhì)鑒定的性能。接下來我們分別進行具體的介紹。
基于DDA采集模式與單細胞組學(xué)的低離子數(shù)目的特點,采用更大的隔離窗口,增加共隔離的離子數(shù)目,這是一種被認為是類似于結(jié)合了傳統(tǒng)的DDA與DIA的采集方法,文獻中將這個方法稱之為寬隔離窗口采集(wide window acquisition ,WWA)策略(如圖1所示)。
圖1:wide window acquisition (WWA)寬隔離窗口采集策略
PD軟件3.0版本自2022年年中發(fā)布以來,其對DDA蛋白質(zhì)組學(xué)數(shù)據(jù)的性能提升有目共睹;如需CHIMERYS的介紹,可具體參考以下鏈接
《好風(fēng)憑借力:CHIMERYS實現(xiàn)蛋白質(zhì)組學(xué)數(shù)據(jù)的性能飛躍》
——賽默飛orbitrap組學(xué)俱樂部公眾號
基于AI算法的CHIMERYS搜索引擎,可在一張二級譜圖中解析出多個PSMs,擅長于解析WWA采集得到的更加復(fù)雜的二級譜圖。
作為 LC-MS/MS的重要組成部分的低流速液相色譜,對減少樣品的復(fù)雜度、增加蛋白質(zhì)組學(xué)的鑒定方面的貢獻尤為重要,通常我們可以通過拉長色譜梯度等方法來實現(xiàn)更好的分離,而這也會引入包括峰展寬在內(nèi)的靈敏度的降低及檢測通量的降低等問題。而新發(fā)布的微柱蝕刻技術(shù)的μPAC系列色譜柱,具有高度有序的排列,有助于更加優(yōu)異的峰寬表現(xiàn)且減小柱殘留,低背壓的設(shè)計也使其可以使用更大的流速,可以更快的上樣、清洗及平衡色譜柱,從而增加檢測通量(賽默飛提供的綜合解決方案如圖2所示)。
圖2:結(jié)合了低流速液相色譜、質(zhì)譜及分析軟件的完整綜合解決方案
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不同的色譜柱性能比較
在色譜柱的比較中,與傳統(tǒng)的填充柱相比,作者對比了110cm的第二代μPAC色譜柱與其他兩款填充型色譜柱(50cm及25cm),如圖3所示,上樣量為12.5ng Hela肽段,30min有效梯度,采用1Th的采集窗口,第二代μPAC色譜柱可以得到蛋白水平66%和肽段水平140%的提升。
而比較不同的μPAC色譜柱(5.5cm原型柱、50cm Neo柱和110cm二代柱),使用復(fù)雜樣品(HeLa, yeast, 和 E. coli按照8:1:1混樣),10ng-400ng的上樣區(qū)間,蛋白鑒定結(jié)果如圖3所示。50cm的Neo色譜柱,在30min及60min梯度上具有優(yōu)異的表現(xiàn),特別是在低上樣量的條件下。我們需要的樣品的通量(梯度時間)及樣品的復(fù)雜度則決定了WWA方法對單細胞樣品的適用性,樣品通量是單細胞蛋白組學(xué)領(lǐng)域的重要關(guān)注點,使用5.5cm色譜柱搭配高流速,可實現(xiàn)到~100spd的水平。
圖3:不同的色譜柱性能比較
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隔離窗口的優(yōu)化
在WWA方法中,若使用了>4m/z的較寬的母離子隔離窗口,使得臨近的母離子被共同碎裂,這時二級譜圖會形成類似于DIA采集方法的混合譜,這種方法不僅能增加鑒定數(shù),還能提高鑒定時對低豐度肽段的靈敏度;對不同大小的隔離窗口進行優(yōu)化,在250pg到400ng的上樣區(qū)間中,可以看到,更寬的隔離窗口更適合較小上樣量的結(jié)果,如250pg和1ng的上樣量下,隔離窗口12m/z和8m/z為最適效果。搭配于CHIMERYS的檢索方法,更大的隔離窗口所提供的譜圖復(fù)雜度,使得對低豐度肽段有更好的挖掘,拓寬了鑒定的豐度的動態(tài)范圍。
圖4:不同上樣量條件下隔離窗口的優(yōu)化
在質(zhì)譜方法中,單細胞的樣品由于離子數(shù)更少,往往需要更高的最大離子注入時間,比如幾百個毫秒,這會導(dǎo)致二級譜圖數(shù)的降低,從而顯著的影響鑒定量。此時我們也可以配合使用更高的分辨率,可以識別更加復(fù)雜的離子,也就是說,我們可以使用更大的隔離窗口來提供更多的離子進行累積,并且通過高分辨率來識別這些離子,而后我們可以通過PD3.0 CHIMERYS引擎來對這些復(fù)雜的混合譜圖進行檢索。
使用經(jīng)典的窄隔離窗口采集方法,與傳統(tǒng)的MS Amanda 2.0 引擎相比,CHIMERYS引擎可提升鑒定量2.6倍;而再加成上寬隔離窗口的WWA采集方法后,則可達到4.6倍的提升水平。
圖5:CHIMERYS搜索引擎提升蛋白質(zhì)組學(xué)鑒定深度
另一篇文獻中,作者使用0.2ng Hela肽段,對不同的隔離窗口、最大離子注入時間、分辨率等參數(shù)進行優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)在MS2分辨率為45k和60k時,我們能夠得到最多的PSMs鑒定數(shù)。在隔離窗口為8或者12Th時,會得到最好的結(jié)果。0.2ng Hela的上樣量,WWA模式可達到2,396個蛋白鑒定,比普通DDA模式鑒定量增加39%。
圖5:采用0.2ngHela肽段及40min對WWA模式質(zhì)譜采集參數(shù)進行優(yōu)化
在短梯度模式下,峰容量降低,使其譜圖的復(fù)雜度更高;CHIMERYS的破解高度復(fù)雜的混合譜的能力,使得更快的色譜分析成為可能。在使用12Th的隔離窗口與60k MS2分辨率的組合條件下,可得到最好的鑒定能力。使用此參數(shù)組合,更快的20min的鑒定量僅比40min少了10%(3160 vs 3524)。這說明,在并未顯著影響蛋白質(zhì)組學(xué)鑒定量的條件下,WWA的采集方法適用于更快速的梯度分離。
由于WWA采集方法被認為是類似于結(jié)合了傳統(tǒng)的DDA與DIA的方式,故文章對不同的采集模式進行了比較;在單細胞水平的比較中(10個Hela細胞及7-10個K562細胞),使用相同的118ms和60K分辨率的二級參數(shù),定性深度的比較中,WWA采集方法可得到最多的鑒定。
圖6:不同的采集模式(DIA, DDA 及 WWA)比較
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結(jié)語
WWA采集方案的提出,為我們進行快速的、更高深度的單細胞蛋白質(zhì)組學(xué)提供了新的思路:基于賽默飛綜合解決方案,我們從全新的Vanquish neo低流速液相色譜、μPAC色譜柱、寬隔離窗口的質(zhì)譜采集策略以及全新的基于AI算法的CHIMERYS搜索引擎,全方面提升單細胞蛋白質(zhì)組學(xué)鑒定深度。