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細(xì)胞自噬的監(jiān)測方法及在癌癥檢測中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):456 發(fā)布日期:2023-11-15 

今年 8 月 24 日,國家自然科學(xué)基金委員會揭曉了 2023 年國自然評審結(jié)果,自噬相關(guān)研究的中標(biāo)數(shù)量高達(dá) 518 項!(來源:ZCOOL 國自然項目查詢系統(tǒng))
言歸正傳!自噬,一種針對細(xì)胞內(nèi)各種成分進(jìn)行降解的基本過程。誰來降解?溶酶體;降解誰?細(xì)胞內(nèi)的各類大分子和亞細(xì)胞成分,例如核酸、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和細(xì)胞器等。
自噬可以是非選擇性的,細(xì)胞質(zhì)物質(zhì)被隔離到自噬體中進(jìn)行吞噬,通常在營養(yǎng)缺乏時發(fā)生。相比之下,選擇性自噬會降解特定靶標(biāo),例如受損的細(xì)胞器:線粒體自噬、溶酶體自噬、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)自噬等等,從而在細(xì)胞質(zhì)量控制中發(fā)揮重要作用 (圖 1)[1][2]。 

 

圖 1. 不同的自噬機(jī)制及特點[2]

 

自噬是一個高度集成的過程,通過促進(jìn)細(xì)胞存活或?qū)е录?xì)胞死亡來維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)[3][4]

  自噬介導(dǎo)的細(xì)胞保護(hù)作用

自噬的主要功能是通過回收必要的細(xì)胞成分來促進(jìn)應(yīng)激/營養(yǎng)限制后的細(xì)胞存活。自噬由營養(yǎng)和能量應(yīng)激、缺氧、氧化還原應(yīng)激和線粒體損傷等多種刺激誘導(dǎo)[4]。

圖 2. 氧化應(yīng)激通過多種機(jī)制誘導(dǎo)自噬[5]。 

 

(A-D): 響應(yīng)饑餓調(diào)節(jié)自噬的主要信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑概述。(E-H):誘導(dǎo)自噬的特定應(yīng)激途徑概述:缺氧 (E);氧化損傷增加 (F); p53系統(tǒng)的干擾 (G)或線粒體功能障礙 (H) 誘導(dǎo)自噬的機(jī)制示意圖。

 

例如,當(dāng)細(xì)胞在同時缺乏營養(yǎng)和生長因子的情況下培養(yǎng)時,自噬到達(dá)最高水平[6]。而在小鼠中,饑餓 24-48 h 后,大多數(shù)組織中的大多數(shù)細(xì)胞顯示出自噬體數(shù)量增加[7]。其次,細(xì)胞必須清除受損的線粒體,以防止 ROS 積聚[5]當(dāng)然,某些應(yīng)激途徑如中度時,也會誘導(dǎo)自噬,防止細(xì)胞死亡 (圖 2)[5][8]。

  自噬誘導(dǎo)細(xì)胞死亡

自噬經(jīng)常在細(xì)胞死亡中觀察到,在某些情況下,抑制自噬可以防止細(xì)胞死亡[9]。由于不同信號通路之間的廣泛串?dāng)_,自噬的促死亡作用非常復(fù)雜[10]。
 

今年 3 月,Jiao Liu 等人報道了 TMEM164 在鐵死亡期間 (而不是饑餓期間) 選擇性介導(dǎo) ATG5 依賴性自噬體形成中的關(guān)鍵作用。TMEM164 通過激活自噬降解鐵蛋白 (Ferritin)、GPX4 和脂滴,以增加鐵積累和脂質(zhì)過氧化,從而促進(jìn)嗜鐵細(xì)胞的死亡。TMEM164 的缺失限制了小鼠體內(nèi)鐵死亡介導(dǎo)的細(xì)胞毒性的抗癌活性,建立了自噬依賴性鐵死亡的新模式[11]。

 

圖 3. TMEM164 在自噬依賴性細(xì)胞死亡中的作用[11]。 

鐵死亡激活劑 (如 RSL3) 會誘導(dǎo) TMEM164 依賴性自噬體形成,導(dǎo)致抗鐵死亡調(diào)節(jié)因子 (如 GPX4、FTH1 和脂滴) 選擇性降解。

 

 

研究表明,GX15-070 可通過增加自噬體的積累來誘導(dǎo)自噬,并促進(jìn) Atg5 (自噬體膜的一個組成部分) 與壞死體 (Necrosome) 的關(guān)鍵成分,即 FADD、RIP1 和 RIP3 的相互作用,觸發(fā)壞死體在自噬體上的組裝。這導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)細(xì)胞死亡信號復(fù)合物的形成,引發(fā)壞死性細(xì)胞死亡[12]。

 

圖 4. GX15-070 通過促進(jìn)壞死體在自噬體上的組裝來觸發(fā)壞死性凋亡[12]。 

自噬在癌癥中具有的雙重作用,具體取決于癌癥的類型和階段[10][13]。
一方面,自噬可以促進(jìn)腫瘤的發(fā)生和轉(zhuǎn)移,目前 FDA 批準(zhǔn)的唯一自噬抑制劑是 Chloroquine 和 Hydroxychloroquine[14]。另一方面,自噬可以通過自身或與其他細(xì)胞死亡途徑協(xié)同促進(jìn)細(xì)胞死亡來增強(qiáng)癌癥治療的功效 (表 1)[10]

表 1. 誘導(dǎo)自和細(xì)胞死亡的藥物治療[10]。 


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隨著自噬研究熱度的增加,其相關(guān)檢測也成為科研“汪”們的密切關(guān)注。細(xì)胞自噬體的數(shù)量和自噬通量常作為細(xì)胞自噬活性水平的指標(biāo)。

  監(jiān)測自噬體的數(shù)量
目前使用三種主要方法來監(jiān)測自噬體的數(shù)量,包括電子顯微鏡、光學(xué)顯微鏡檢測 LC3 的亞細(xì)胞定位以及生化檢測 LC3 的膜相關(guān)形式[15]。

最傳統(tǒng)的方法是電子顯微鏡,通過觀察樣品判斷是否有自噬泡樣結(jié)構(gòu)出現(xiàn)。電鏡下,發(fā)生自噬的細(xì)胞可見損傷的細(xì)胞器如線粒體的腫脹變性,其周圍有空泡狀雙層膜樣結(jié)構(gòu),或雙層膜環(huán)繞線粒體形成自噬體,也可見自噬溶酶體內(nèi)最終不能降解的殘體等 (圖 5 和圖 6A)[15][16]。

 

圖 5. 自噬體和自溶酶體形態(tài)[15]。

其次,哺乳動物自噬蛋白 LC3 是自噬體的標(biāo)志物,可通過更廣泛使用的光學(xué)顯微鏡和生化方法所檢測。內(nèi)源性 LC3 或 GFP-LC3 通過熒光顯微鏡觀察為彌散的細(xì)胞質(zhì)池或主要代表自噬體的點狀結(jié)構(gòu) (圖 6 B-C)。
  監(jiān)測自噬通量
目前測量自噬通量的主要方法之一是監(jiān)測 LC3 周轉(zhuǎn)率,當(dāng)用溶酶體試劑 (如氯化銨、Chloroquine 或 Bafilomycin A1或溶酶體蛋白酶抑制劑 (如 E64d處理細(xì)胞時,LC3-II 的降解被阻斷,導(dǎo)致 LC3-II 的積累。因此,樣品之間 LC3-II 量的差異代表了被遞送到溶酶體進(jìn)行降解的 LC3 量 (圖 6D)[15]。

圖 6. 自噬體數(shù)量和自噬通量的監(jiān)測方法[15]。 


其次,可以通過免疫印跡分析或流式細(xì)胞術(shù)定量或通過熒光顯微鏡定性觀察總細(xì)胞 LC3 的量,與自噬通量成反比。除了 LC3 之外,其他自噬底物的水平也可用于監(jiān)測自噬通量 (圖 6)。 

 

 

本期小 M 為大家總結(jié)了細(xì)胞自噬的類型、相關(guān)機(jī)制圖及特征等相關(guān)基礎(chǔ)知識,并介紹了自噬的細(xì)胞保護(hù)與促死亡的雙重功能,最后為大家整理了有關(guān)細(xì)胞自噬的相關(guān)檢測方法!那本期就到這里啦~咱們下期再見~
 

Chloroquine

Chloroquine 是自噬 (autophagy) 和 Toll 樣受體 (TLRs) 的抑制劑。Chloroquine 有效抑制 SARS-CoV-2 (COVID-19) 感染 (EC50=1.13 μM)。

Hydroxychloroquine

Hydroxychloroquine 可以抑制 Toll 樣受體 7/9 (TLR7/9) 信號傳導(dǎo)。Hydroxychloroquine 有效抑制 SARS-CoV-2 感染。

Vorinostat

Vorinostat (SAHA) 是一種有效的,可口服的 HDAC1,HDAC2,HDAC3 (Class I),HDAC6 和 HDAC7 (Class II) 和 Class IV (HDAC11) 的抑制劑。

Sorafenib

Sorafenib 誘導(dǎo)細(xì)胞自噬 (autophagy) 和凋亡 (apoptosis),并具有抗腫瘤活性。Sorafenib 也是一種 ferroptosis 激動劑。

Dactolisib

Dactolisib (BEZ235) 是一種具有口服活性的、雙重的 pan-class I PI3K 和 mTOR 抑制劑。Dactolisib (BEZ235) 抑制 mTORC1 和 mTORC2。

EACC

EACC 是可逆的自噬 (autophagy) 抑制劑,可阻斷自噬通量。EACC 選擇性抑制自噬體特異性的 SNARE Stx17 的易位,從而阻止自噬體與溶酶體的融合。



[1] Vargas JNS,et al. The mechanisms and roles of selective autophagy in mammals. Nat Rev Mol Cell Biol. 2023 Mar;24(3):167-185.
 
[2] Aman Y,et al. Autophagy in healthy aging and disease. Nat Aging. 2021 Aug;1(8):634-650.
 
[3] Noguchi M, et al. Autophagy as a modulator of cell death machinery. Cell Death Dis. 2020 Jul 8;11(7):517. 
 
[4] Denton D, et al. Autophagy-dependent cell death. Cell Death Differ. 2019 Mar;26(4):605-616. 
 
[5] Kroemer G, et al. Autophagy and the integrated stress response. Mol Cell. 2010 Oct 22;40(2):280-93. 
 
[6] Boya P, et al. Inhibition of macroautophagy triggers apoptosis. Mol Cell Biol. 2005 Feb;25(3):1025-40. 
 
[7] Mizushima N. The role of the Atg1/ULK1 complex in autophagy regulation. Curr Opin Cell Biol. 2010 Apr;22(2):132-9. 
 
[8] Bellot G, et al. Hypoxia-induced autophagy is mediated through hypoxia-inducible factor induction of BNIP3 and BNIP3L via their BH3 domains. Mol Cell Biol. 2009 May;29(10):2570-81. 
 
[9] Jung S, et al. Autophagy as a decisive process for cell death. Exp Mol Med. 2020 Jun;52(6):921-930. 
 
[10] Denton D, et al. Autophagy as a pro-death pathway. Immunol Cell Biol. 2015 Jan;93(1):35-42. 
 
[11] Liu J, et al. TMEM164 is a new determinant of autophagy-dependent ferroptosis. Autophagy. 2023 Mar;19(3):945-956.  
 
[12] Basit F, et al. Obatoclax (GX15-070) triggers necroptosis by promoting the assembly of the necrosome on autophagosomal membranes. Cell Death Differ. 2013 Sep;20(9):1161-73.  
 
[13] Li X, et al. Autophagy and autophagy-related proteins in cancer. Mol Cancer. 2020 Jan 22;19(1):12. 
 
[14] Mohsen S, et al. Autophagy Agents in Clinical Trials for Cancer Therapy: A Brief Review. Curr Oncol. 2022 Mar 5;29(3):1695-1708. 
 
[15] Mizushima N, et al. Methods in mammalian autophagy research. Cell. 2010 Feb 5;140(3):313-26. 
 
[16] Martinet W, et al. In situ detection of starvation-induced autophagy. J Histochem Cytochem. 2006 Jan;54(1):85-96.

 

 

來源:上海皓元生物醫(yī)藥科技有限公司
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標(biāo)簽: 自噬 細(xì)胞死亡 癌癥
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