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貼壁CHOMito-Photina®/H3發(fā)光蛋白細胞在FLIPRTETRA系統(tǒng)中的化學發(fā)光細胞實驗

瀏覽次數(shù):5763 發(fā)布日期:2015-6-1  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負
貼壁CHOMito-Photina®/H3發(fā)光蛋白細胞在FLIPRTETRA系統(tǒng)中的化學發(fā)光細胞實驗
 
簡介
對于藥物研發(fā)早期先導化合物尋找和確認,配有發(fā)光蛋白檢測應(yīng)用的FLIPRTETR是簡便且可信賴的高通量篩選系統(tǒng)。發(fā)光蛋白檢測部件包含了增強型CCD (ICCD) 相機和懸浮細胞系統(tǒng)。ICCD相機的增益可調(diào)節(jié)功能使得FLIPRTETRA系統(tǒng)既可以適應(yīng)基于染料的明亮的熒光實驗,也可以記錄信號強度較弱的化學發(fā)光蛋白實驗。本篇應(yīng)用文章描述了貼壁CHO Mito-Photina®/H3發(fā)光蛋白細胞在FLIPRTETRA系統(tǒng)中的實驗結(jié)果和表現(xiàn)。
 
關(guān)于mito-Photina細胞系
CHO mito-Photina/H3是由Axxam SPA (Milan, Italy)提供的細胞系,表達了線粒體靶點去輔基發(fā)光蛋白和 G蛋白偶聯(lián)受體組胺3 (H3),連同了Gαq蛋白。與腔腸素孵育時,Apo- Photina在細胞中表達形成了一個激活的Photina 分子,其在結(jié)合GPCR被激活引起的細胞內(nèi)鈣離子流后可以發(fā)射出藍色光。 化學發(fā)光檢測型 ICCD 相機可輕易地檢測出Photina細胞發(fā)出的高相關(guān)光單位 (RLU)信號,無需相機飽和。使用相機的增益可調(diào)節(jié)功能使得FLIPRTETRA系統(tǒng)同樣可以檢測很低的光信號并且在化學發(fā)光實驗中所需細胞數(shù)量較少,減少了細胞培養(yǎng)方面的需求。
 
材料
培養(yǎng)基:Dulbecco’s MEM/ 營養(yǎng)素混合F-12并添加了HEPES (Cat. #11039-047), 1.35 mM 丙酮酸鈉 (Cat. #11360- 070), 10% FBS (Cat. #10082-147), 1%青霉素/鏈霉素(Cat. #15070-063)。500 μg/mL遺傳霉素(Cat.#10131-027)。1% L-谷胱甘肽 (Cat. #25030-081), 均來自Invitrogen公司。
Versene (Invitrogen Cat. #15040-066)
不含鈣鎂離子的PBS (Invitrogen Cat. #14190 或類似溶液)
 0.05% 含EDTA的Trypsin (Invitrogen Cat.#25300-054)
天然的腔腸素(細胞提供者建議)
BSA Media: DMEM/F12 (不含酚紅),含15 mM HEPES (Invitrogen Cat.#11039-021),0.1% BSA (Fraction V heat shocked, low endotoxin, low protease (Sigma Cat. #A6003 或類似物)  Water for injection (Irvine Scientific Cat.#9309 or equivalent)
 Tyrode Buffer (pH7.4)—alternate for BSA Media (all chemicals from Sigma): 130 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM
384-well 黑壁底透記錄板(Corning Cat. #3172 or equivalent)
 
方法
發(fā)光蛋白的化學發(fā)光實驗中涉及到細胞、化合物和儀器的準備。儀器設(shè)置在表1、2、3中有相應(yīng)的描述。更多的信息可以參照FLIPRTETRA系統(tǒng)使用說明書中化學發(fā)光實驗方案的7.13章節(jié)。
 
細胞準備
第一步:實驗前,復(fù)蘇細胞并在篩選抗生素條件下培養(yǎng),遵照細胞提供者的指導方案操作。
第二步:開始實驗前的一天用trypsin從flask中消化細胞
第三步:在無抗生素的培養(yǎng)基中,按照每孔2500-10000個細胞在384孔黑壁底透的記錄板上種上細胞。37°C 和5% CO2過夜培養(yǎng)。
第四步:實驗當天上午,去除記錄板孔中的培養(yǎng)基。
第五步:在光照強度弱的環(huán)境中,每孔中加入25 μL BSA培養(yǎng)基或含有5 μM 天然腔腸素的替代培養(yǎng)基。
第六步:蓋上板蓋,然后包上錫箔紙以避光,然后在22℃或更低溫度孵育4-6小時以優(yōu)化腔腸素反應(yīng)。
 
化合物板準備
化合物板能包含足夠的體積滿足3-4個記錄板的需求。準備384孔的聚丙烯化合物板并預(yù)留足夠的體積避免向細胞板移液時產(chǎn)生氣泡。
 
 
 
 
 
 
實驗運行
第一步:加載384孔黑色FLIPRTETRA系統(tǒng)槍頭
第二步:在ScreenWorks®軟件中創(chuàng)建一個FLIPRTETRA系統(tǒng)實驗方案。 相機和記錄參數(shù)設(shè)置見表1。移液和加樣參數(shù)見表2和3。在本次實驗中未使用懸浮細胞裝置。移液加樣過程中的維持和排空體積設(shè)置可能會產(chǎn)生氣泡,引起信號誤差。更新軟件設(shè)置之前保存文件。
第三步:確保腔腸素加入至細胞板并避光。選擇下列合適的方法來完成您的實驗。
這里列出了三種不同過程的實驗方案:
 
只有激動劑的實驗
第四步: 加入25 μL 2X 激動劑至細胞板中,然后記錄數(shù)據(jù)30-60秒。
 
或者
激動劑和抑制劑的實驗
第四步: 加入25 μL 2X 抑制劑至細胞板并記錄數(shù)據(jù)。
第五步: 避光孵育細胞板15-30分鐘。
第六步: 加入25 μL 3X 激動劑至細胞板并記錄數(shù)據(jù)
 
或者
實驗前抑制劑的添加
第四步: 實驗前先加入抑制劑至細胞板并孵育是可接受的。
第五步: 避光孵育細胞板15-30分鐘。
第六步:加入25 µL 3X 激動劑至細胞板并記錄數(shù)據(jù)。
 
數(shù)據(jù)簡化
圖1所示的RLU 信號的數(shù)據(jù)簡化是在ScreenWorks軟件中根據(jù)信號的反應(yīng)/背景進行計算的。圖2所示的RLU 信號簡化是在ScreenWorks軟件中根據(jù)信號的最大值—最小值進行計算的。量效曲線是采用GraphPad Prism® 3軟件進行計算的。
 
結(jié)果
檢測范圍評估
在本次實驗中,采用細胞數(shù)梯度減少來決定實驗的檢測范圍。細胞在37°C和5%CO2條件下過夜培養(yǎng)使其在實驗前充分貼壁。配有化學發(fā)光檢測部件的FLIPRTETRA 系統(tǒng)在記錄時添加激動劑至貼壁細胞。RLU值既可以用于最大值減去最小值的計算也可以用于效應(yīng)相對于背景信號的計算。根據(jù)實驗中每孔1250個細胞計算的EC50值與每孔10000個細胞的結(jié)果是類似的。圖1顯示了隨著細胞數(shù)量增加信號窗口的增加。在每孔2500個細胞時,信號窗口大約是300:1,與之相比較FLIPR® Calcium 4 Assay Kit熒光信號窗口大約是4:1(數(shù)據(jù)未列出)。之后的貼壁細胞實驗采用每孔2500個細胞來完成,過夜種板培養(yǎng)。貼壁細胞Photina 實驗可以在中低細胞密度下完成,并且在EC80 篩選濃度下得到很好的Z值。圖1所示信號效應(yīng)是按照反應(yīng)/背景來計算的。
 
激動劑和抑制劑的反應(yīng)
在圖2 所示的實驗中,在優(yōu)化好的細胞濃度條件下比較了激動劑效應(yīng)和抑制劑效應(yīng)。384 孔黑壁底透的細胞板每孔中種下2500 個CHO mito-Photina/H3 細胞并在37°C 和5% CO2 下過夜培養(yǎng)。培養(yǎng)基去除后,在實驗緩沖液中加入5 μM 天然腔腸素并避光孵育四小時。
 
在本實驗中,數(shù)據(jù)簡化結(jié)果是按照記錄階段最大值減去最小值來計算的。激動劑的EC50 和抑制劑IC50 值與文獻報道的數(shù)值是一致的。
 
 
 
 
 
 
結(jié)論
配有化學發(fā)光檢測部件的FLIPRTETRA 系統(tǒng)表現(xiàn)出更卓越的信號檢測能力。不僅表現(xiàn)在一個相機可以檢測熒光和化學發(fā)光,而且相機的增益可調(diào)節(jié),從而在化學發(fā)光檢測時可達到無與倫比的動態(tài)范圍。在進行化學發(fā)光高通量篩選實驗中系統(tǒng)是被證明很有用途的。在配有化學發(fā)光檢測部件的FLIPRTETRA 系統(tǒng)中基于發(fā)光蛋白的鈣流實驗具有以下優(yōu)點:
 
Ø 系統(tǒng)無與倫比的動態(tài)范圍可以檢測從極亮至昏暗的所有光信號。
Ø 更低的背景噪音,更高的信噪比和更大信號窗口
Ø 更低的細胞數(shù)量,減少細胞培養(yǎng)工作量
Ø 實驗更靈活,貼壁細胞或懸浮細胞均可進行實驗
Ø 可超過6 小時的長時間持續(xù)實驗
Ø 無論是激活還是抑制實驗均可以得到與文獻報道高度一致性的數(shù)據(jù)結(jié)果
Ø 消除了化合物自發(fā)熒光對結(jié)果的干擾
Ø 更低的試劑耗費
 
參考文獻
S. Bovolenta, M. Foti, Lohmer, S., S. Corazza. Development of a Ca2+-Activated Photoprotein, Photina, and Its Application to High-Throughput Screening. J Biomol Screen 2007; Vol. 12(5) 694–704.
來源:美谷分子儀器(上海)有限公司
聯(lián)系電話:021-24197251
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