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徠卡FLIM-FRET在病毒侵染動態(tài)研究中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):1243 發(fā)布日期:2020-9-7  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
病毒侵染動態(tài)研究莫發(fā)愁,徠卡FLIM-FRET顯身手

齊瑤

研究難點
病毒是一種個體微小、結(jié)構(gòu)簡單、只含一種核酸(DNA或RNA)、必須在活細(xì)胞內(nèi)寄生并以復(fù)制方式增殖的非細(xì)胞型生物。而病毒侵染宿主細(xì)胞卻是一個非常復(fù)雜的過程,主要分為吸附(Attachment)、進(jìn)入(Entry/Penetration)、復(fù)制(Replication)、大分子合成(Biosynthesis)、裝配(Assembly)、釋放(Release)等幾個階段,如圖1。

圖1.HIV病毒侵染人源細(xì)胞過程示意圖[1]

如何從初始的吸附和進(jìn)入階段進(jìn)行干預(yù)阻斷,是病毒性疾病防治的切入點之一。以人類免疫缺陷病毒(HIV),也就是引發(fā)艾滋病的病原為例,它通過顆粒表面的包膜糖蛋白(Env)與免疫細(xì)胞表面的CD4分子、輔助受體互作,實現(xiàn)病毒與宿主細(xì)胞的融合、感染過程?茖W(xué)家們曾運用BlaM(β-內(nèi)酰胺酶分析:測量細(xì)胞群中病毒融合的技術(shù))或細(xì)胞內(nèi)病毒衣殼蛋白p24分析等多種方法對病毒的侵染過程進(jìn)行檢測,但由于技術(shù)的限制,均不能直接實時監(jiān)測病毒進(jìn)入宿主細(xì)胞的動態(tài)融合過程[2]。因此,在時間和空間上都具備高靈敏度的FLIM-FRET,成為了該項研究的破冰技術(shù)。

FLIM-FRET
經(jīng)常關(guān)注徠卡課堂的同學(xué)們,想必對FLIM-FRET都不陌生了。在這里,我們再簡單回顧一下幾個關(guān)鍵性的概念。

熒光壽命:熒光是指熒光分子吸收能量后,其處于基態(tài)(S0)的電子躍遷至激發(fā)態(tài)(S1),經(jīng)過短暫停留,由激發(fā)態(tài)(S1)再回到基態(tài)(S0)時釋放出光的現(xiàn)象,而熒光分子停留在激發(fā)態(tài)的時間就是熒光壽命(圖2A)。與熒光光譜一樣,熒光壽命也是熒光物質(zhì)的一種內(nèi)在特有性質(zhì)。

FLIM(Fluorescence Lifetime Imaging,熒光壽命成像):是一種基于熒光壽命的顯微成像技術(shù),其成像結(jié)果提供像素位點的壽命信息(如圖2B),使得我們在熒光強(qiáng)度成像之外,能更加深入地對樣品進(jìn)行功能性測量。熒光壽命成像具有不同于熒光強(qiáng)度成像的眾多優(yōu)點,如不受熒光物質(zhì)濃度、光漂白、激發(fā)光強(qiáng)度等因素的影響。但會因為分子構(gòu)象、分子間相互作用、分子微環(huán)境、生理狀態(tài)等條件改變而發(fā)生變化,因此熒光壽命可用于分析分子的這些變化,基于熒光壽命測量的FRET是FLIM的重要應(yīng)用之一。
圖2. A. 熒光壽命示意圖;B. FLIM:提供每個像素位點的熒光壽命信息(左);基于熒光壽命信息的細(xì)胞成像結(jié)果(右)

FRET(Fluorescence Resonance Energy Transfer,熒光共振能量轉(zhuǎn)移):供體熒光基團(tuán)(Donor)的發(fā)射光譜與受體熒光基團(tuán)(Acceptor)的吸收光譜有一定的重疊,當(dāng)供體被激發(fā)后,且兩個熒光基團(tuán)間的距離小于10nm時,處于激發(fā)態(tài)的供體將把一部分或全部能量轉(zhuǎn)移給受體,使受體被激發(fā),即發(fā)生熒光能量的非放射性轉(zhuǎn)移現(xiàn)象,為FRET(如圖3),這一過程也伴隨著供體熒光壽命的縮短和受體熒光壽命的延長。
圖3. FRET原理(左)[2]及FRET實例(右)
(右):用FLIM-FRET測量N1E-115 細(xì)胞膜上PH結(jié)構(gòu)域的相互作用,發(fā)生FRET的細(xì)胞呈現(xiàn)較短的熒光壽命(偏綠),未發(fā)生FRET的細(xì)胞呈現(xiàn)較長的熒光壽命(偏紅)

FLIM-FRET兼具 FLIM 和 FRET 兩者的優(yōu)勢,不受熒光物質(zhì)濃度、光漂白、激發(fā)光強(qiáng)度等因素的影響,且樣品制備簡單,測量結(jié)果準(zhǔn)確性高,易重復(fù)。因此,F(xiàn)LIM-FRET非常適合于進(jìn)行分子間相互作用、分子構(gòu)象或生理狀態(tài)改變等的研究。
應(yīng)用實例
那么科學(xué)家是如何將FLIM-FRET應(yīng)用于監(jiān)測HIV病毒侵入宿主細(xì)胞的動態(tài)過程呢,讓我們看以下兩個實例:
(一)利用FRET生物傳感器示蹤HIV進(jìn)入宿主細(xì)胞過程[3]來自牛津大學(xué)的研究者設(shè)計了一個HIV-Chameleon生物傳感器,由一對能夠發(fā)生FRET的熒光團(tuán)(mTFP1和eYFP)組成,兩個熒光團(tuán)之間通過短肽序列(包含煙草蝕刻病毒TEV蛋白酶切割位點)鏈接在一起(如圖4A右)。TEV蛋白酶(TEVp)可以與HIV-1 Vpr蛋白或Gag蛋白融合,摻入病毒顆粒中。當(dāng)包含TEV蛋白酶的病毒與表達(dá)生物傳感器的細(xì)胞融合時,Vpr-TEV或Gag-TEV(rTEV)被釋放到細(xì)胞質(zhì)中,并特異性地裂解鏈接序列,增加mTFP1與eYFP之間距離至10nm以上,阻斷FRET,并可通過FLIM進(jìn)行測量。圖4B為FLIM偽彩圖與圖像中所有像素的壽命直方圖,其中藍(lán)色表示較短的壽命(無融合),紅色表示較長的壽命(融合)。這樣就可以實時定量熒光壽命的改變,從而示蹤病毒與宿主細(xì)胞融合的瞬間動態(tài)過程。作者將所得結(jié)果與廣泛使用的BlaM分析結(jié)果比對,二者具有高度匹配性,因此,HIV-Chameleon生物傳感器與FRET-FLIM的結(jié)合使用,可以實現(xiàn)單個活細(xì)胞或群體的病毒融合動力學(xué)實時監(jiān)測。
圖4. HIV-Chameleon檢測病毒融合[3]
A.(左)TEV蛋白酶(TEVp)與HIV-1 Vpr蛋白或Gag蛋白融合的兩種包裝過程;(右)HIV-Chameleon生物傳感器示意圖;B.病毒融合前后的熒光壽命成像(Scale Bar=30μm)
 
(二)細(xì)胞代謝水平對于HIV-1侵染宿主細(xì)胞的影響[4]研究人員在HIV-1病毒的侵染機(jī)制研究中發(fā)現(xiàn),病毒侵染過程中,宿主細(xì)胞代謝水平與膜狀態(tài)改變有關(guān)。將FRET生物傳感器瞬時轉(zhuǎn)染到細(xì)胞中(如圖5A),記錄瞬時表達(dá)這些生物傳感器的細(xì)胞的FLIM圖像,并進(jìn)行BlaM分析,結(jié)果表明,乳酸濃度較高的單細(xì)胞與病毒融合性更高,此外,具有更高ATP/ADP比率的細(xì)胞與病毒的融合性更高(如圖5B)。也就是說,糖酵解通量較高的細(xì)胞更容易被HIV-1感染。
 
圖5. 單個細(xì)胞中的相對乳酸濃度和ATP / ADP比率與HIV-1融合相關(guān)[4];
(A)FRET生物傳感器;(B)同樣區(qū)域細(xì)胞的BlaM(上)和FLIM成像(下),白色實線所示為正在與病毒融合的細(xì)胞,在BlaM中呈紅色,熒光壽命較長,白色虛線所示為未融合的細(xì)胞,BlaM中呈綠色,熒光壽命較短

進(jìn)一步的分析表明,2-脫氧-d-葡萄糖(2-DG)對糖酵解的靶向抑制作用大大降低了HIV-1的融合和感染。而用2-DG處理的細(xì)胞分別具有較低的膜膽固醇和較高的膜張力值。因此,作者構(gòu)建了一種基于Ypet/eCFP FRET的膜張力感應(yīng)器MSS,由一個彈性張力傳感模塊和兩個與脂分子連接的蛋白質(zhì)組成,這兩個蛋白質(zhì)錨定在質(zhì)膜的Raft和非Raft區(qū)域,對膜張力變化非常敏感(如圖6)。通過FLIM測量單個細(xì)胞MSS張力探針?biāo)矔r表達(dá),證實了HIV-1需要在膜張力較低的區(qū)域進(jìn)入細(xì)胞,也進(jìn)一步確定了宿主細(xì)胞糖酵解活性和膜張力之間的聯(lián)系,其在活細(xì)胞中的單病毒融合水平上實時影響HIV-1融合。
圖6.(左)靈敏型膜張力感應(yīng)器MSS探針以及對照組非靈敏型感應(yīng)器KMSS探針示意圖;(右)多種不同處理條件下,TZM-bl 細(xì)胞表達(dá)MSS的FRET效率成像[4]

總結(jié)
FLIM-FRET提供了基于群體方法或光譜方法所難以實現(xiàn)的單細(xì)胞微環(huán)境中的分辨率,能以高時空分辨率在單個細(xì)胞中可視化和識別影響HIV-1感染的關(guān)鍵因素,實現(xiàn)單一病毒跟蹤技術(shù)。這對于在HIV-1感染早期階段尋找艾滋病的治療方法,有著重要的科學(xué)意義。

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[1] https://ricochetscience.com/viruses-human-genome/
[2] Molecular Sensors and Nanodevices (Second Edition). Chapter 5 - Optical transducers: Optical molecular sensing and spectroscopy(2019)
[3] Imaging real-time HIV-1 virion fusion with FRET-based biosensors. Jones DM, Padilla-Parra S. Sci Rep. 2015 Aug 24;5:13449.
[4] Single-cell glycolytic activity regulates membrane tension and HIV-1 fusion. Coomer CA, Carlon-Andres I, Iliopoulou M, Dustin ML, Compeer EB, Compton AA, Padilla-Parra S. PLoS Pathog. 2020 Feb 21;16(2):e1008359.

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