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Blue Pippin全自動回收PCR產(chǎn)物助力提高病毒準(zhǔn)種的鑒定準(zhǔn)確性

瀏覽次數(shù):650 發(fā)布日期:2024-5-23  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
Blue Pippin全自動回收PCR產(chǎn)物提高病毒準(zhǔn)種的鑒定準(zhǔn)確性

病毒準(zhǔn)種(Viral quasispecies)是指遺傳物質(zhì)高度相似但不完全相同的異質(zhì)性病毒群體。早期,病毒準(zhǔn)種研究由單個病毒模板的Sanger測序完成,但通量低(僅限于幾十種病毒)、成本高,不適合大量病毒的同時測序。進(jìn)入二代測序,該研究依然面臨讀長短(150-600bp),無法對病毒準(zhǔn)種的跨基因連鎖進(jìn)行有效分析。而PacBio和納米孔測序因為固有的錯誤和PCR過程中引入的錯誤,尤其是PCR過程的重組嵌合體多被誤認(rèn)是體內(nèi)病毒重組產(chǎn)生,大大降低了病毒準(zhǔn)種的評估準(zhǔn)確性。

為了解決這類問題,研究人員在第一輪cDNA PCR擴增的引物加入6-12nt的唯一分子標(biāo)識符(unique molecular identifiers ,UMIs),標(biāo)記不同來源的病毒,用以消除后續(xù)分析PCR和測序產(chǎn)生的錯誤。然而單個UMI(sUMI)不能保證在PCR過程中始終識別模板轉(zhuǎn)換(如重組)產(chǎn)物。因此在cDNA另一條鏈上加入第二個UMI,比較不同UMI組合的頻率及家族之間的UMI序列(dUMI),可識別出代表PCR期間“重組”分子的Reads。但是dUMI也存在一些問題,如去除文庫中多余引物的純化步驟造成樣本損失,導(dǎo)致dUMI的準(zhǔn)確度可能和sUMI并無太大差別。因此,迫切需要找到一種有效的測序方法,提高病毒準(zhǔn)種識別和鑒定的準(zhǔn)確性。

華盛頓大學(xué)醫(yī)學(xué)與公共衛(wèi)生學(xué)院微生物學(xué)的一個研究團(tuán)隊于2023年在《 Virus Evolution 》發(fā)表一篇“Optimized SMRT-UMI protocol produces highly accurate sequence datasets from diverse populations – application to HIV-1 quasispecies”文章聚焦于解決上述問題。在該項研究中,基于PacBio滾環(huán)測序方法,通過比較sUMI和dUMI方法、全自動DNA片段回收和磁珠回收,以及不同PCR循環(huán)數(shù)等因素對于文庫制備的影響,開發(fā)了一種適合病毒準(zhǔn)種測序分析的建庫方法。

實驗方法:
  • 1.cDNA合成
構(gòu)建含有UMI-1的引物(圖1A),用該引物反轉(zhuǎn)錄樣本中的RNA生成cDNA(圖1B,1 )。
  • 2.巢式PCR第一輪擴增
對于sUMI樣本,用上一步cDNA直接第一輪PCR擴增;對于dUMI樣本,先用一輪PCR引入另一條UMI-2序列,磁珠純化后完成第一輪PCR擴增(圖1B,2-5)。
  • 3.樣本回收
利用美國Sage Science公司的Blue Pippin全自動DNA片段回收儀和磁珠法分別回收PCR特定片段長度的產(chǎn)物(圖1B,6 )。
  • 4.巢式PCR第二輪擴增
將回收后的PCR產(chǎn)物再次擴增延伸后,磁珠純化去除多余引物(圖1B,7-8 )。
  • 5.制備待測環(huán)狀DNA分子
將 SMRTbell 條形碼接頭連接到 PCR 產(chǎn)物的末端,以形成環(huán)狀分子以供測序(圖1B,9 )。
  • 6.測序分析
PacBio SMRT測序并完成生信分析(圖1C),識別具有同樣UMI的環(huán)狀共有序列 (CCS),最終得到病毒準(zhǔn)種的結(jié)果(圖1D)。

圖1 實驗整體流程 其中Blue Pippin用于純化第一次PCR產(chǎn)物

實驗結(jié)果
  • 不同PCR產(chǎn)物純化的方法對于實驗效果的影響
在巢式PCR第一輪擴增后,分別比較Sage Science公司Blue Pippin和磁珠法純化擴增產(chǎn)物以及未純化產(chǎn)物,發(fā)現(xiàn)Blue Pippin 純化更有效地去除較小片段的 PCR 雜帶,而且產(chǎn)物得率遠(yuǎn)高于磁珠法。(圖2)

圖2 根據(jù)純化方法和PCR循環(huán)數(shù)對產(chǎn)物進(jìn)行凝膠電泳和分析。Blue Pippin純化的條帶更粗,且沒有雜帶,說明回收得率更高,純化效果更好

不僅如此,在巢式PCR第二輪擴增中,比較不同純化方法、PCR循環(huán)次數(shù)對PCR產(chǎn)生重組DNA比例的影響,發(fā)現(xiàn)Blue Pippin純化的樣本中,重組DNA雜帶的比例明顯少于磁珠法純化樣本以及未純化樣本。說明Blue Pippin純化效果優(yōu)于磁珠法(圖3)。此外,同樣利用Blue Pippin純化樣本,如果PCR循環(huán)數(shù)越少,純化樣本中重組DNA雜帶的比例也越低。因此,同樣樣本體系,通過Blue Pippin可減少PCR循環(huán)數(shù)并提升文庫質(zhì)量。

圖3 每個sUMI家族的重組讀長比例,按PCR中的平均模板輸入分組,其中每個點代表一個單獨的sUMI家族,按純化方法和總PCR循環(huán)數(shù)著色。
(Blue Pippin純化樣本的測序?qū)嶒灲Y(jié)果說明,相對于磁珠和未純化樣本,Blue Pippin純化能夠有效減少PCR中重組雜帶的產(chǎn)生)
 
  • UMI標(biāo)記方法的優(yōu)化改進(jìn)
通過比較sUMI和dUMI測序結(jié)果,作者設(shè)定了一個sUMI的檢測閾值線——同一個 sUMI 族中,如果任何位置的最小一致性小于70%,則判定該序列存在重組或者其他錯誤(稱為 0.7 判定原則)。利用這一判定原則,作者篩選了sUMI測序結(jié)果并與dUMI的測序結(jié)果進(jìn)行比較。結(jié)果發(fā)現(xiàn)絕大部分判定為正確序列的dUMI都能通過0.7 sUMI判定原則。說明這一標(biāo)準(zhǔn)不但有足夠的準(zhǔn)確性,而且避免了dUMI中由于需要額外的純化步驟造成的樣本損失等弊端。

原文鏈接:https://doi.org/10.1101/2023.02.23.529831

總結(jié)

使用Blue Pippin純化PCR產(chǎn)物,使用0.7sUMI判定標(biāo)準(zhǔn),可以有效提高病毒準(zhǔn)種測序結(jié)果準(zhǔn)確性,并避免dUMI帶來的得率減少等其他弊端。是一種可行的檢測方法。

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