蛋白質(zhì)組學(xué)基礎(chǔ)：快速理解DDA與DIA的方法
基于質(zhì)譜(MS)的蛋白質(zhì)組學(xué)實現(xiàn)了生物樣本中蛋白質(zhì)表達(dá)譜的定性定量分析，并且可以輔助研究各種不同狀態(tài)下蛋白的相互作用。典型的自下而上的蛋白質(zhì)組學(xué)工作流程(圖1)包括幾個主要步驟：(i) 從所研究的生物樣品中提取蛋白質(zhì)混合物，(ii) 對分離的蛋白質(zhì)濃度進(jìn)行測定，(iii) 通過凝膠電泳或液相色譜法對蛋白質(zhì)進(jìn)行分離（可選），(iv) 蛋白質(zhì)酶切， (v) 質(zhì)譜檢測，(vi) 數(shù)據(jù)庫搜索蛋白質(zhì)鑒定。
圖1 自下而上的蛋白質(zhì)組學(xué)流程[1]
近年來，許多質(zhì)譜方法從數(shù)據(jù)依賴采集(DDA)過渡到數(shù)據(jù)非依賴采集(DIA)。雖然DIA靈敏度和覆蓋度高，但并不是所有的研究都適合，很多情況下DDA反而更合適。對于很多初涉質(zhì)譜蛋白質(zhì)組學(xué)領(lǐng)域的研究者來說，往往對DDA和DIA的方法難以理解，因此，本期推送我們給大家詳細(xì)介紹一下這兩種不同的質(zhì)譜采集方法。
首先，我們要對質(zhì)譜采集信號的過程有個簡單的概念。簡言之，我們的肽段在經(jīng)過液相（LC）洗脫之后，被電離霧化成為帶電離子（即母離子，precursor）進(jìn)入質(zhì)譜內(nèi)部，首先經(jīng)過一級母離子的全掃描（即survey scan），得到MS1譜圖，然后針對這些掃描到的母離子，選擇哪些離子去做下一步的MS2碎裂和掃描，就涉及了DDA還是DIA的問題。
DDA
DDA是Data Dependent Acquisition的縮寫，即數(shù)據(jù)依賴采集，指的是在一個循環(huán)內(nèi)，選取離子強(qiáng)度Top N的MS1母離子進(jìn)行MS2碎裂與掃描（原理示意見圖2），N在質(zhì)譜采集方法中進(jìn)行設(shè)定，一般為10-20。隨著肽段流出，完成整個液相梯度內(nèi)的譜圖采集，產(chǎn)生的下機(jī)數(shù)據(jù)隨后采用相應(yīng)的軟件完成肽段和蛋白的鑒定和定量。
圖2 DDA譜圖采集示意圖
DDA是質(zhì)譜采集方法的一種大類，與不同的實驗方法結(jié)合，又可以產(chǎn)生不同的數(shù)據(jù)類型，滿足不同的實驗需求，包括常規(guī)的定性、非標(biāo)記定量（LFQ）、標(biāo)記定量（TMT/SILAC等）。
DDA的優(yōu)勢在于實驗方法簡單，其譜圖的復(fù)雜性較低，不僅可以進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)的搜庫分析，還可以進(jìn)行l(wèi)arge search space搜索，如PTM search、酶切半特異性及非特異性搜索，甚至開放搜索。針對未知樣本，則需要進(jìn)行從頭測序（de novo）分析。DDA的局限性在于檢測動態(tài)范圍有限，易損失低豐度的離子，從而產(chǎn)生較多的定量缺失值，導(dǎo)致重現(xiàn)性不穩(wěn)定，對于復(fù)雜樣本的全蛋白組鑒定深度不夠。
針對DDA數(shù)據(jù)，PEAKS®軟件既可以針對未知樣本單獨進(jìn)行從頭測序分析，也可以進(jìn)行de novo輔助的搜庫分析（DB search），以及非標(biāo)記定量和各種標(biāo)記定量分析。此外，PEAKS®還整合了獨有的免疫肽組分析、未知翻譯后修飾及突變位點檢索、完整糖肽鑒定（Studio Only）（圖3），滿足絕大部分DDA數(shù)據(jù)的定性、定量分析需求。
DDA的優(yōu)勢在于實驗方法簡單，其譜圖的復(fù)雜性較低，不僅可以進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)的搜庫分析，還可以進(jìn)行l(wèi)arge search space搜索，如PTM search、酶切半特異性及非特異性搜索，甚至開放搜索。針對未知樣本，則需要進(jìn)行從頭測序（de novo）分析。DDA的局限性在于檢測動態(tài)范圍有限，易損失低豐度的離子，從而產(chǎn)生較多的定量缺失值，導(dǎo)致重現(xiàn)性不穩(wěn)定，對于復(fù)雜樣本的全蛋白組鑒定深度不夠。
針對DDA數(shù)據(jù)，PEAKS®軟件既可以針對未知樣本單獨進(jìn)行從頭測序分析，也可以進(jìn)行de novo輔助的搜庫分析（DB search），以及非標(biāo)記定量和各種標(biāo)記定量分析。此外，PEAKS®還整合了獨有的免疫肽組分析、未知翻譯后修飾及突變位點檢索、完整糖肽鑒定（Studio Only）（圖3），滿足絕大部分DDA數(shù)據(jù)的定性、定量分析需求。
圖3 PEAKS®軟件DDA分析工作流
DIA
DIA的全稱是Data Independent Acquisition，即數(shù)據(jù)非依賴采集，另一種說法為sequential window Acquisition of All Theoretical Fragment ions（SWATH），簡單理解就是二級的采集不依賴一級信號離子的選擇，而是把MS1所有掃描到的母離子按照m/z劃分為若干個小的窗口，對每個窗口內(nèi)的所有母離子進(jìn)行二級碎裂和掃描，可以認(rèn)為是無差別“攻擊”（原理示意見圖4）。
圖4 DIA譜圖采集示意圖
DIA的譜圖復(fù)雜度要遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于DDA，因此在DIA方法開發(fā)的初期，數(shù)據(jù)分析基本上依賴于譜圖庫搜索（Spectral library）的方法，即要事先通過多組份分餾的方法將所有待分析樣本的混合物進(jìn)行高pH液相色譜分離，然后通過DDA的采集方法獲得建庫數(shù)據(jù)，使用建庫數(shù)據(jù)的鑒定結(jié)果作為譜圖庫，然后進(jìn)行DIA數(shù)據(jù)的定性和定量分析。譜圖庫搜索速度快、準(zhǔn)確性高，但也存在一些局限，比如建庫深度不夠，建庫需要額外的樣品消耗、成本和機(jī)時等。隨著譜圖解析算法的發(fā)展，針對DIA的數(shù)據(jù)使用理論參考序列庫進(jìn)行直接解譜已經(jīng)得到了廣泛應(yīng)用，深度學(xué)習(xí)模型的引入，大大提高了DIA直接數(shù)據(jù)庫搜索的譜圖解析率和準(zhǔn)確性，也使得DIA de novo分析成為可能[2]。
DIA的優(yōu)勢在于對樣本中所有多肽的無偏檢測，檢測動態(tài)范圍廣，突破了DDA對低豐度樣本檢測的局限，非常適合大規(guī)模、微量樣本的蛋白質(zhì)組學(xué)研究。但DIA對質(zhì)譜硬件和軟件的要求比DDA更高，綜合成本相應(yīng)就有所增加，此外存在很多翻譯后修飾，也會導(dǎo)致譜圖更加復(fù)雜。
PEAKS®軟件支持DIA數(shù)據(jù)的譜圖庫搜索（Spectral Library search）、直接數(shù)據(jù)庫搜索（direct DB search）、DIA數(shù)據(jù)的從頭測序（DIA de novo）分析之外，還獨有DIA免疫肽組的定性定量分析功能，也支持hybrid-DIA數(shù)據(jù)分析（圖5）。
DIA的優(yōu)勢在于對樣本中所有多肽的無偏檢測，檢測動態(tài)范圍廣，突破了DDA對低豐度樣本檢測的局限，非常適合大規(guī)模、微量樣本的蛋白質(zhì)組學(xué)研究。但DIA對質(zhì)譜硬件和軟件的要求比DDA更高，綜合成本相應(yīng)就有所增加，此外存在很多翻譯后修飾，也會導(dǎo)致譜圖更加復(fù)雜。
PEAKS®軟件支持DIA數(shù)據(jù)的譜圖庫搜索（Spectral Library search）、直接數(shù)據(jù)庫搜索（direct DB search）、DIA數(shù)據(jù)的從頭測序（DIA de novo）分析之外，還獨有DIA免疫肽組的定性定量分析功能，也支持hybrid-DIA數(shù)據(jù)分析（圖5）。
圖5 PEAKS®軟件DIA數(shù)據(jù)分析工作流
DDA or DIA, that is the question.
作為質(zhì)譜蛋白質(zhì)組學(xué)研究的兩大類方法，DDA和DIA各有優(yōu)缺點，并沒有絕對的好壞之分，適合的才是最好的。DIA更加適合進(jìn)行需要高覆蓋率和定量準(zhǔn)確性的大規(guī)模蛋白質(zhì)組學(xué)研究。Rebecca C. Poulos等 (2020) [3]將卵巢癌組織、前列腺癌組織和酵母蛋白按照不同比例混合，以HEK293T細(xì)胞蛋白作為對照，歷時4個月，在6臺質(zhì)譜儀上共采集了1560針DIA數(shù)據(jù)，期間還穿插了5000多針其他樣品的數(shù)據(jù)采集。數(shù)據(jù)分析結(jié)果顯示，在短時間內(nèi)獲得的DIA-MS數(shù)據(jù)重現(xiàn)性和定量準(zhǔn)確性均較高，但隨著采集間隔時間的延長和儀器性能的變化，CV值會累積增加，因此對于大隊列、長時間的數(shù)據(jù)采集，仍需要開發(fā)合適的歸一化校正方法。
(Rebecca C. Poulos等,2020)
DDA 更加適合需要高靈敏度和準(zhǔn)確性的小規(guī)模研究，尤其是對于純化蛋白、翻譯后修飾組學(xué)的研究。此外，DDA可搭配各種不同的標(biāo)記實驗方法，提升定量的穩(wěn)定性。Matthias Mann等 (2023)[4]使用DDA 分析了小鼠心臟、骨骼肌等7種組織線粒體的全蛋白組和磷酸化蛋白組，共鑒定到1266個線粒體蛋白，超過MitoCarta 3.0數(shù)據(jù)庫中的92%，且定量CV小于20%。線粒體磷酸化蛋白質(zhì)組表現(xiàn)出廣泛的線粒體內(nèi)磷酸化，且與融合和裂變的組織特異性調(diào)節(jié)有關(guān)。該研究是 DDA 對細(xì)胞器蛋白質(zhì)組及磷酸化修飾高靈敏鑒定的典型示例。
（Matthias Mann等,2023）
劃重點
PEAKS®提供DDA和DIA兼容的數(shù)據(jù)分析完整解決方案，一站式滿足發(fā)現(xiàn)和靶向質(zhì)譜蛋白質(zhì)組學(xué)領(lǐng)域的分析需求。點擊PEAKS Studio--兼容DDA和DIA，發(fā)現(xiàn)與靶向蛋白質(zhì)組學(xué)質(zhì)譜數(shù)據(jù)一站式軟件平臺了解更多PEAKS®軟件的相關(guān)功能，也可通過電話021-60919891、郵件sales-china@bioinfor.com與我們聯(lián)系或下方“閱讀原文”提交您的咨詢信息！
參考文獻(xiàn)
參考文獻(xiàn)
- Dupree, E.J.; Jayathirtha, M.; Yorkey, H.; Mihasan, M.; Petre, B.A.; Darie, C.C. A Critical Review of Bottom-Up Proteomics: The Good, the Bad, and the Future of This Field. Proteomes 2020, 8, 14. https://doi.org/10.3390/proteomes8030014
- Tran, N.H., Qiao, R., Xin, L. et al. Deep learning enables de novo peptide sequencing from data-independent-acquisition mass spectrometry. Nat Methods 16, 63–66 (2019). https://doi.org/10.1038/s41592-018-0260-3
- Poulos, R.C., Hains, P.G., Shah, R. et al. Strategies to enable large-scale proteomics for reproducible research. Nat Commun 11, 3793 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-17641-3
- Hansen, F. M., Kremer, L. S., Karayel, O., Bludau, I., Larsson, N.-G., Kühl, I., & Mann, M. (2024). Mitochondrial phosphoproteomes are functionally specialized across tissues. Life Science Alliance, 7(2), e202302147. doi:10.26508/lsa.202302147
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