蛋白質(zhì)組技術(shù)的研究進展

大規(guī)模基因組測序計劃的實施已改變生命科學(xué)的重心，在相當短的時期內(nèi)，一些原核生物和某些低等真核生物的基因組序列已被測定. 1995年，流感嗜血桿菌基因組序列首次被破譯，在此后不到兩年的時間，近50個細菌的基因組序列已被完成. 然而，這僅僅是理解有機物功能的一個起點. 在基因組時代，許多DNA序列信息僅提供相關(guān)基因組的結(jié)構(gòu)和功能. 然而，對基因產(chǎn)物（mRNA和蛋白質(zhì)）的理解是理解細胞生物學(xué)的一個不可缺少的部分. DNA序列信息不能預(yù)測：1）基因表達產(chǎn)物是否或何時被翻譯；2）基因產(chǎn)物的相應(yīng)含量；3）翻譯后修飾的程度；4）基因剔除或過表達的影響；5）遺留的小基因或<300 bp的ORFs的出現(xiàn)；6）多基因現(xiàn)象的表型. 此外，mRNA水平的測量并不能完全揭示細胞調(diào)節(jié)；且蛋白質(zhì)的樣品較mRNA 穩(wěn)定；蛋白質(zhì)和mRNA之間的相關(guān)系數(shù)僅為0.4～0.5，還存在轉(zhuǎn)錄后加工、翻譯調(diào)節(jié)以及翻譯后加工等. 故而，“基因組時代”的迅猛發(fā)展同時激起了人們對“后基因組時代”中蛋白質(zhì)組研究的需求.

1 蛋白質(zhì)組的含義

蛋白質(zhì)組（Proteome）的概念最先由Marc Wilkins提出，指由一個基因組（genOME），或一個細胞、組織表達的所有蛋白質(zhì)（PROTein）. 蛋白質(zhì)組的概念與基因組的概念有許多差別，它隨著組織、甚至環(huán)境狀態(tài)的不同而改變. 在轉(zhuǎn)錄時，一個基因可以多種mRNA形式剪接，并且，同一蛋白可能以許多形式進行翻譯后的修飾. 故一個蛋白質(zhì)組不是一個基因組的直接產(chǎn)物，蛋白質(zhì)組中蛋白質(zhì)的數(shù)目有時可以超過基因組的數(shù)目. ��

蛋白質(zhì)組學(xué)（Proteomics）處于早期“發(fā)育”狀態(tài)，這個領(lǐng)域的專家否認它是單純的方法學(xué)，就像基因組學(xué)一樣，不是一個封閉的、概念化的穩(wěn)定的知識體系，而是一個領(lǐng)域. 蛋白質(zhì)組學(xué)集中于動態(tài)描述基因調(diào)節(jié)，對基因表達的蛋白質(zhì)水平進行定量的測定，鑒定疾病、藥物對生命過程的影響，以及解釋基因表達調(diào)控的機制. 作為一門科學(xué)，蛋白質(zhì)組研究并非從零開始，它是已有20年歷史的蛋白質(zhì)（多肽）譜和基因產(chǎn)物圖譜技術(shù)的一種延伸. 多肽圖譜依靠雙向電泳（Two-dimensional gel electrophoresis, 2-DE）和進一步的圖象分析；而基因產(chǎn)物圖譜依靠多種分離后的分析，如質(zhì)譜技術(shù)、氨基酸組分分析等.

2 蛋白質(zhì)組研究的核心 用于分離的雙向電泳（2-DE）

蛋白質(zhì)組研究的發(fā)展以雙向電泳技術(shù)作為核心. 雙向電泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分離約1 000個E.coli蛋白，并表明蛋白質(zhì)譜不是穩(wěn)定的，而是隨環(huán)境而變化. 雙向電泳原理簡明，第一向進行等電聚焦，蛋白質(zhì)沿pH梯度分離，至各自的等電點；隨后，再沿垂直的方向進行分子量的分離. 目前，隨著技術(shù)的飛速發(fā)展，已能分離出10 000個斑點（spot）. 當雙向電泳斑點的全面分析成為現(xiàn)實的時候，蛋白質(zhì)組的分析變得可行.

樣品制備（sample prepareation）和溶解同樣事關(guān)2-DE的成效，目標是盡可能擴大其溶解度和解聚，以提高分辨率. 用化學(xué)法和機械裂解法破碎以盡可能溶解和解聚蛋白，兩者聯(lián)合有協(xié)同作用. 對IEF（isoelectric focusing）樣品的預(yù)處理涉及溶解、變性和還原來完全破壞蛋白間的相互作用，并除去如核酸等非蛋白物質(zhì). 理想的狀態(tài)是人們應(yīng)一步完成蛋白的完全處理. 近來，在“變性劑雞尾酒”中，含14～16個碳的磺基甘氨酸三甲內(nèi)鹽（ASB_14～16）的裂解液效果最好. 而離液劑2 mol/L硫脲和表面活性劑4%CHAPS的混合液促使疏水蛋白從IPG（immobilized pH gradients）膠上的轉(zhuǎn)換. 三丁基膦（Tributyl phosphine，TBP ）取代β-巰基乙醇或DTT完全溶解鏈間或鏈內(nèi)的二硫鍵，增強了蛋白的溶解度，并導(dǎo)致轉(zhuǎn)至第二向的增加. 兩者通過不同的方法來增加蛋白的溶解度，作為互補試劑會更有效. 在保持樣品的完整性的前提下，可利用超離和核酸內(nèi)切酶去除核酸（DNA）. 除此之外，機械力被用來對蛋白分子解聚，如超聲破碎等. 另外，添加PMSF等蛋白酶抑制劑，可保持蛋白完整性. 由于商品化的IPG膠條是干燥脫水的，可在其水化的過程中加樣，覆蓋整個IPG膠，避免在樣品杯中的沉淀所致的樣品丟失. 此外，低豐度蛋白（low abundance protein）在細胞內(nèi)可能具有重要的調(diào)節(jié)功能，代表蛋白質(zhì)組研究的“冰山之尖”，故分離低豐度蛋白是一種挑戰(zhàn). 亞細胞分級和蛋白質(zhì)預(yù)分級、提高加樣量（已達到1～15 mg級的標準）應(yīng)用敏感性檢測，可以提高其敏感性. 如一種多肽免疫2-DE印跡（MI-2DE）是利用幾種單克隆抗體技術(shù)來分析和檢測.提高組蛋白和核糖體蛋白等堿性蛋白（basic proteins）的分離是另一難點. 由于堿性pH范圍內(nèi)凝膠基質(zhì)的不穩(wěn)定及逆向電滲流（EOF）的產(chǎn)生，對PI（等電點）超過10的堿性蛋白，通過產(chǎn)生��0～10%��的山梨醇梯度和16%的異丙醇可減少之. 亦可用雙甲基丙烯酰胺來增加基質(zhì)的穩(wěn)定性. ��

 2-DE面臨的挑戰(zhàn)是高分辨率和重復(fù)性. 高分辨率確保蛋白最大程度的分離，高重復(fù)性允許進行凝膠間配比（match）. 對2-DE而言，有3種方法分離蛋白：
1）ISO-DALT（isoelectric focus）以O(shè)’Farrell’s技術(shù)為基礎(chǔ). 第一向應(yīng)用載體兩性電解質(zhì)（carrier ampholyte, CA），在管膠內(nèi)建立pH梯度. 隨著聚焦時間的延長，pH梯度不穩(wěn)，易產(chǎn)生陰極漂移.
2） NEPHGE（non-equilibrium pH gradient electrophoresis）用于分離堿性蛋白（pH>7.0）. 如果聚焦達到平衡狀態(tài)，堿性蛋白會離開凝膠基質(zhì)而丟失. 因此，在等電區(qū)域的遷移須在平衡狀態(tài)之前完成，但很難控制.
3）IPG-DALT發(fā)展于80年代早期. 由于固相pH梯度（Immobilized pH gradient, IPG）的出現(xiàn)解決了pH梯度不穩(wěn)的問題. IPG通過immobiline共價偶聯(lián)于丙烯酰胺產(chǎn)生固定的pH梯度，克服了IEF的缺點，從而達到高度的重復(fù)性. 目前可以精確制作線性、漸進性和S型曲線，范圍或?qū)捇蛘�的pH梯度. 新的酸性pH 3～5或堿性pH 6～11的IPG凝膠梯度聯(lián)合商品化的pH 4～7的梯度可對蛋白質(zhì)形成蛋白質(zhì)組重疊群（proteomic contigs）從而有效分離.

分離后的斑點檢測（spot detection）亦很重要. 所采用的檢測策略和分離后所采用的方法的相互作用是很重要的. 此外，還需考慮反應(yīng)的線性、飽和閾/動態(tài)范圍、敏感性、對細胞蛋白群的全體定量分析的適應(yīng)性、可行性. 目前，沒有一種蛋白染色覆蓋廣泛的濃度和PI及分離后分析技術(shù). 銀染已成為一種檢測2-DE的流行方法，可檢測少到2～5ng的蛋白，因此較考馬斯亮藍R-250敏感. 多數(shù)糖蛋白不能被考馬斯亮藍染色，一些有機染料不適于PVDF膜. 放射性標記不依賴其代謝的活性，并僅適于對合成的蛋白質(zhì)檢測. 另有一種改良的2-DE（差異凝膠電泳），即應(yīng)用兩種不同的染料熒光標記兩個樣品，使在同一凝膠上電泳后的凝膠圖象為兩個，避免了幾種2-DE的比較，可在納克級進行檢測.

較早期相比，2-DE有兩個主要的進步：首先，極高的重復(fù)性使有機體的參考圖譜，可通過Internet獲得，來比較不同組織類型、不同狀態(tài)的基因表達；其次，高加樣量使得2-DE成為一項真正的制備型技術(shù).

3 蛋白質(zhì)組技術(shù)的支柱－－-鑒定技術(shù)（Identification）

    如果目前分離蛋白質(zhì)組的最好技術(shù)是2-DE，那么隨之而來的挑戰(zhàn)是數(shù)百數(shù)千個蛋白如何被鑒定. 在這里，我們不考慮傳統(tǒng)的蛋白鑒定方法，如免疫印跡法、內(nèi)肽的化學(xué)測序、已知或未知蛋白的comigration分析，或者在一個有機體中有意義的基因的過表達. 并不是因為這些方法無效，而是因為它們通常耗時、耗力，不適合高流通量的篩選. 目前，所選用的技術(shù)包括對于蛋白鑒定的圖象分析、微量測序；進一步對肽片段進行鑒定的氨基酸組分分析和與質(zhì)譜相關(guān)的技術(shù).

    （1） 圖象分析技術(shù)（Image analysis）. “滿天星”式的2-DE圖譜分析不能依靠本能的直覺，每一個圖象上斑點的上調(diào)、下調(diào)及出現(xiàn)、消失，都可能在生理和病理狀態(tài)下產(chǎn)生，必須依靠計算機為基礎(chǔ)的數(shù)據(jù)處理，進行定量分析. 在一系列高質(zhì)量的2-DE凝膠產(chǎn)生（低背景染色，高度的重復(fù)性）的前提下，圖象分析包括斑點檢測、背景消減、斑點配比和數(shù)據(jù)庫構(gòu)建. 首先，采集圖象通常所用的系統(tǒng)是電荷耦合CCD（charge coupled device）照相機；激光密度儀（laser densitometers）和Phospho或Fluoro�瞚magers，對圖象進行數(shù)字化. 并成為以象素（pixels）為基礎(chǔ)的空間和網(wǎng)格. 其次，在圖象灰度水平上過濾和變形，進行圖象加工，以進行斑點檢測. 利用Laplacian，Gaussian，DOG（difference of Gaussians） opreator使有意義的區(qū)域與背景分離，精確限定斑點的強度、面積、周長和方向. 圖象分析檢測的斑點須與肉眼觀測的斑點一致. 在這一原則下，多數(shù)系統(tǒng)以控制斑點的重心或最高峰來分析，邊緣檢測的軟件可精確描述斑點外觀，并進行邊緣檢測和鄰近分析，以增加精確度. 通過閾值分析、邊緣檢測、銷蝕和擴大斑點檢測的基本工具還可恢復(fù)共遷移的斑點邊界. 以PC機為基礎(chǔ)的軟件Phoretix-2D正挑戰(zhàn)古老的Unix為基礎(chǔ)的2-D分析軟件包. 第三，一旦2-DE圖象上的斑點被檢測，許多圖象需要分析比較、增加、消減或均值化. 由于在2-DE中出現(xiàn)100%的重復(fù)性是很困難的，由此凝膠間的蛋白質(zhì)的配比對于圖象分析系統(tǒng)是一個挑戰(zhàn). IPG技術(shù)的出現(xiàn)已使斑點配比變得容易. 因此，較大程度的相似性可通過斑點配比向量算法在長度和平行度觀測. 用來配比的著名軟件系統(tǒng)包括Quest，Lips，Hermes，Gemini等，計算機方法如相似性、聚類分析、等級分類和主要因素分析已被采用，而神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)、子波變換和實用分析在未來可被采用. 配比通常由一個人操作，其手工設(shè)定大約50個突出的斑點作為“路標”，進行交叉配比. 之后，擴展至整個膠. 例如：精確的PI和MW（分子量）的估計通過參考圖上20個或更多的已知蛋白所組成的標準曲線來計算未知蛋白的PI和MW. 在凝膠圖象分析系統(tǒng)依據(jù)已知蛋白質(zhì)的pI值產(chǎn)生PI網(wǎng)絡(luò)，使得凝膠上其它蛋白的PI按此分配. 所估計的精確度大大依賴于所建網(wǎng)格的結(jié)構(gòu)及標本的類型. 已知的未被修飾的大蛋白應(yīng)該作為標志，變性的修飾的蛋白的PI估計約在±0.25個單位. 同理，已知蛋白的理論分子量可以從數(shù)據(jù)庫中計算，利用產(chǎn)生的表觀分子量的網(wǎng)格來估計蛋白的分子量. 未被修飾的小蛋白的錯誤率大約30%，而翻譯后蛋白的出入更大. 故需聯(lián)合其他的技術(shù)完成鑒定. ��

    （2） 微量測序（microsequencing）. 蛋白質(zhì)的微量測序已成為蛋白質(zhì)分析和鑒定的基石，可以提供足夠的信息. 盡管氨基酸組分分析和肽質(zhì)指紋譜（PMF）可鑒定由2-DE分離的蛋白，但最普通的N-末端Edman降解仍然是進行鑒定的主要技術(shù). 目前已實現(xiàn)蛋白質(zhì)微量測序的自動化. 首先使經(jīng)凝膠分離的蛋白質(zhì)直接印跡在PVDF膜或玻璃纖維膜上，染色、切割，然后直接置于測序儀中，可用于subpicomole水平的蛋白質(zhì)的鑒定. 但有幾點需注意：Edman降解很緩慢，序列以每40 min 1個氨基酸的速率產(chǎn)生；與質(zhì)譜相比，Edman降解消耗大；試劑昂貴，每個氨基酸花費3～4$. 這都說明泛化的Edman降解蛋白質(zhì)不適合分析成百上千的蛋白質(zhì). 然而，如果在一個凝膠上僅有幾個有意義的蛋白質(zhì)，或者如果其他技術(shù)無法測定而克隆其基因是必需的，則需要進行泛化的Edman降解測序.

    近來，應(yīng)用自動化的Edman降解可產(chǎn)生短的N-末端序列標簽，這是將質(zhì)譜的序列標簽概念用于Edman降解，業(yè)已成為一種強有力的蛋白質(zhì)鑒定. 當對Edman的硬件進行簡單改進，以迅速產(chǎn)生N-末端序列標簽達10～20個/d，序列檢簽將適于在較小的蛋白質(zhì)組中進行鑒定.若聯(lián)合其他的蛋白質(zhì)屬性，如氨基酸組分分析、肽質(zhì)質(zhì)量、表現(xiàn)蛋白質(zhì)分子量、等電點，可以更加可信地鑒定蛋白質(zhì). 選擇BLAST程序，可與數(shù)據(jù)庫相配比. 目前，采用一種Tagldent的檢索程序，還可以進行種間比較鑒定，又提高了其在蛋白質(zhì)組研究中的作用.

    （3） 與質(zhì)譜（mass spectrometry）相關(guān)的技術(shù). 質(zhì)譜已成為連接蛋白質(zhì)與基因的重要技術(shù)，開啟了大規(guī)模自動化的蛋白質(zhì)鑒定之門. 用來分析蛋白質(zhì)或多肽的質(zhì)譜有兩個主要的部分，1）樣品入機的離子源，2）測量被介入離子的分子量的裝置. 首先是基質(zhì)輔助激光解吸附電離飛行時間質(zhì)譜（MALDI-TOF）為一脈沖式的離子化技術(shù). 它從固相標本中產(chǎn)生離子，并在飛行管中測其分子量. 其次是電噴霧質(zhì)譜（ESI-MS），是一連續(xù)離子化的方法，從液相中產(chǎn)生離子,聯(lián)合四極質(zhì)譜或在飛行時間檢測器中測其分子量. 近年來，質(zhì)譜的裝置和技術(shù)有了長足的進展. 在MALDI-TOF中，最重要的進步是離子反射器（ion reflectron）和延遲提�。╠elayed ion extraction），可達相當精確的分子量. 在ESI-MS中，納米級電霧源（nano-electrospray source）的出現(xiàn)使得微升級的樣品在30～40 min內(nèi)分析成為可能. 將反相液相色譜和串聯(lián)質(zhì)譜（tandem MS）聯(lián)用，可在數(shù)十個picomole的水平檢測；若利用毛細管色譜與串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用，則可在低picomole到高femtomole水平檢測；當利用毛細管電泳與串聯(lián)質(zhì)譜連用時，可在小于femtomole的水平檢測^［25］. 甚至可在attomole水平進行. 目前多為酶解、液相色譜分離、串聯(lián)質(zhì)譜及計算機算法的聯(lián)合應(yīng)用鑒定蛋白質(zhì). 下面以肽質(zhì)指紋術(shù)和肽片段的測序來說明怎樣通過質(zhì)譜來鑒定蛋白質(zhì).

    1）肽質(zhì)指紋術(shù)（peptide mass fingerprint, PMF）是由Henzel等人于1993年提出. 用酶（最常用的是胰酶）對由2-DE分離的蛋白在膠上或在膜上于精氨酸或賴氨酸的C-末端處進行斷裂，斷裂所產(chǎn)生的精確的分子量通過質(zhì)譜來測量（MALDI-TOF-MS，或為ESI-MS），這一技術(shù)能夠完成的肽質(zhì)量可精確到0.1個分子量單位. 所有的肽質(zhì)量最后與數(shù)據(jù)庫中理論肽質(zhì)量相配比（理論肽是由實驗所用的酶來“斷裂”蛋白所產(chǎn)生的）. 配比的結(jié)果是按照數(shù)據(jù)庫中肽片段與未知蛋白共有的肽片段數(shù)目作一排行榜，“冠軍”肽片段可能代表一個未知蛋白.若冠亞軍之間的肽片段存在較大差異，且這個蛋白可與實驗所示的肽片段覆蓋良好，則說明正確鑒定的可能性較大.

    2）肽片段（peptide fragment）的部分測序. 肽質(zhì)指紋術(shù)對其自身而言，不能揭示所衍生的肽片段或蛋白質(zhì). 為進一步鑒定蛋白質(zhì)，出現(xiàn)了一系列的質(zhì)譜方法用來描述肽片段. 用酶或化學(xué)方法從N-或C-末端按順序除去氨基酸，形成梯形肽片段（ladder peptide）. 首先以一種可控制的化學(xué)模式從N-末端降解，可產(chǎn)生大小不同的一系列的梯形肽片段，所得一定數(shù)目的肽質(zhì)量由MALDI-TOF-MS測量. 另一種方法涉及羧基肽酶的應(yīng)用，從C-末端除去不同數(shù)目的氨基酸形成肽片段. 化學(xué)法和酶法可產(chǎn)生相對較長的序列，其分子量精確至以區(qū)別賴氨酸（128.09）和谷氨酰胺（128.06）. 或者，在質(zhì)譜儀內(nèi)應(yīng)用源后衰變（post-source decay, PSD）和碰撞誘導(dǎo)解離（collision-induced dissociation, CID），目的是產(chǎn)生包含有僅異于一個氨基酸殘基質(zhì)量的一系列肽峰的質(zhì)譜. 因此，允許推斷肽片段序列. 肽片段PSD的分析在MALDI反應(yīng)器上能產(chǎn)生部分序列信息. 首先進行肽質(zhì)指紋鑒定. 之后，一個有意義的肽片段在質(zhì)譜儀被選作“母離子”，在飛行至離子反應(yīng)器的過程中降解為“子離子”. 在反應(yīng)器中，用逐漸降低的電壓可測量至檢測器的不同大小的片段. 但經(jīng)常產(chǎn)生不完全的片段. 現(xiàn)在用肽片段來測序的方法始于70年代末的CID，可以一個三聯(lián)四極質(zhì)譜ESI-MS或MALDI-TOF-MS聯(lián)合碰撞器內(nèi)來完成. 在ESI-MS中，由電霧源產(chǎn)生的肽離子在質(zhì)譜儀的第一個四極質(zhì)譜中測量，有意義的肽片段被送至第二個四極質(zhì)譜中，惰性氣體轟擊使其成為碎片，所得產(chǎn)物在第三個四極質(zhì)譜中測量. 與MALDI-PSD相比，CID穩(wěn)定、強健、普遍，肽離子片段基本沿著酰胺鍵的主架被轟擊產(chǎn)生梯形序列. 連續(xù)的片段間差異決定此序列在那一點的氨基酸的質(zhì)量. 由此，序列可被推測. 由CID圖譜還可獲得的幾個序列的殘基，叫做“肽序列標簽”. 這樣，聯(lián)合肽片段母離子的分子量和肽片段距N-、C�捕说木嚯x將足以鑒定一個蛋白質(zhì).

    （4） 氨基酸組分分析. 1977年首次作為鑒定蛋白質(zhì)的一種工具，是一種獨特的“腳印”技術(shù). 利用蛋白質(zhì)異質(zhì)性的氨基酸組分特征，成為一種獨立于序列的屬性，不同于肽質(zhì)量或序列標簽. Latter首次表明氨基酸組分的數(shù)據(jù)能用于從2-DE凝膠上鑒定蛋白質(zhì). 通過放射標記的氨基酸來測定蛋白質(zhì)的組分，或者將蛋白質(zhì)印跡到PVDF膜上，在155℃進行酸性水解1 h，通過這一簡單步驟的氨基酸的提取，每一樣品的氨基酸在40min內(nèi)自動衍生并由色譜分離，常規(guī)分析為100個蛋白質(zhì)/周. 依據(jù)代表兩組分間數(shù)目差異的分數(shù)，對數(shù)據(jù)庫中的蛋白質(zhì)進行排榜，“冠軍”蛋白質(zhì)具有與未知蛋白質(zhì)最相近的組分，考慮冠亞軍蛋白質(zhì)分數(shù)之間的差異，僅處于冠軍的蛋白質(zhì)的可信度大. Internet上存在多個程序可用于氨基酸組分分析，如AACompIdent，ASA，F(xiàn)INDER，AAC-PI，PROP-SEARCH等，其中，在PROP-SEARCH中，組分、序列和氨基酸的位置被用來檢索同源蛋白質(zhì). 但仍存在一些缺點，如由于不足的酸性水解或者部分降解會產(chǎn)生氨基酸的變異. 故應(yīng)聯(lián)合其他的蛋白質(zhì)屬性進行鑒定.

4 蛋白質(zhì)組研究的百科全書 數(shù)據(jù)庫（database）

蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)庫（proteome database）被認為是蛋白質(zhì)組知識的儲存庫，包含所有鑒定的蛋白質(zhì)信息，如蛋白質(zhì)的順序、核苷酸順序、2-D PAGE、3-D結(jié)構(gòu)、翻譯后的修飾、基因組及代謝數(shù)據(jù)庫等. 例如，SWISS-2DPAGE數(shù)據(jù)庫包括人類，細菌，細胞等物種的信息. 其中，E.coli SWISS-2DPAGE數(shù)據(jù)庫是EXPASY分子生物學(xué)服務(wù)器的一部分，通過www的URL網(wǎng)址可以查詢.

當前的計算機和網(wǎng)絡(luò)技術(shù)，讓我們將所有的數(shù)據(jù)庫連在一起，并允許我們從一個數(shù)據(jù)庫中的一條信息遨游到其他的數(shù)據(jù)庫；將一個研究對象的數(shù)據(jù)與其他各種蛋白質(zhì)組中的相關(guān)數(shù)據(jù)或圖譜相連. 分析型軟件工具被稱為蛋白質(zhì)組分析機器人、數(shù)據(jù)分析軟件包. 在既定的狀態(tài)下，定量研究蛋白質(zhì)的表達水平，或者計算機輔助數(shù)據(jù)庫系統(tǒng)建立可將實驗推進一步.因此，蛋白質(zhì)組分析技術(shù)聯(lián)合蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫，計算機網(wǎng)絡(luò)和其他軟件包合在一起稱為蛋白質(zhì)組的機控百科全書（Cyber-encyclopaedia of the proteome）.

蛋白質(zhì)組和基因組共同分析可以產(chǎn)生大量的數(shù)據(jù). 當評估每一個數(shù)據(jù)庫的價值時，難免要考慮兩個條件：1）數(shù)據(jù)庫是否在任一時刻保持最新；2）何時能夠相互連接，且以整體狀態(tài)評估. 目前的發(fā)展趨勢：1）信息量呈指數(shù)增長；2）蛋白質(zhì)組計劃的實施會產(chǎn)生新的數(shù)據(jù)庫；3）致力于模擬細胞內(nèi)蛋白質(zhì)的相互作用的新型數(shù)據(jù)庫；4）建立高級、智慧型的咨詢工具是必需的.

5 蛋白質(zhì)組技術(shù)的規(guī)模 高流通量篩選（HTS）

HTS（High throughput screening）至今在蛋白質(zhì)組研究中已成為現(xiàn)實. 在最近的一年內(nèi)，由于制藥工業(yè)對此的需求，樣品輸入自動化得以進展. 目前，正在設(shè)計的機器人可自動處理2-DE后電轉(zhuǎn)至PVDF膜. 原形機器人加工、傳輸?shù)鞍踪|(zhì)至質(zhì)譜或以液相色譜為基礎(chǔ)的分析儀，如進行斑點切割，操縱、控制多種PMF、氨基酸組分分析所需的化學(xué)反應(yīng)，使每天最小的流通量達1000個蛋白. 此外，必須選擇適用的軟件包，如應(yīng)用第二代COMBINED來處理輸出的數(shù)據(jù)，自動咨詢本地或網(wǎng)上的數(shù)據(jù)庫而進行系列的評估. 大量的數(shù)據(jù)分析表明HTS是刻不容緩的. 目前，對質(zhì)譜已設(shè)想一個三級方案來處理大規(guī)模的蛋白質(zhì)組：1）MALDI-TOF-MS以每天大于1000個蛋白的速率分析；2）通過ESI-MS/MS或SEQUEST，以每天每臺機器分析幾打蛋白質(zhì)的速率進行序列標簽；3）對由串聯(lián)質(zhì)譜所得的新蛋白或有意義蛋白進行全長肽段的測序，從而提供足夠的信息通過核酸探針或簡并PCR引物獲得有意義的基因.

綜上所述,高分辨率、高敏感性和高流通性的分離和分離后鑒定技術(shù),結(jié)合準確、全面的數(shù)據(jù)庫技術(shù), 使蛋白質(zhì)組技術(shù)用于生物研究卓有成效. 但僅鑒定蛋白質(zhì)是不夠的，蛋白質(zhì)組世界的挑戰(zhàn)是完善蛋白質(zhì)質(zhì)和量的分析,設(shè)想細胞活性、功能的全體性概念. 在此基礎(chǔ)上,蛋白質(zhì)組分析將會促進未來生命科學(xué)的整體發(fā)展