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高內(nèi)涵成像技術(shù)在網(wǎng)絡(luò)集成式細(xì)胞內(nèi)特征的公共數(shù)據(jù)庫(LINCS)項目中的應(yīng)用-Molecular Devices ImageXpress MicroXLS

瀏覽次數(shù):4503 發(fā)布日期:2014-3-26  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
特點
 
1.得到單細(xì)胞水平上反映細(xì)胞生理功能的各種細(xì)胞內(nèi)特征的海量數(shù)據(jù)。
 
2.采用免洗一步染料標(biāo)記法,操作簡單、實時檢測、 結(jié)果準(zhǔn)確。
 
3.使用高通量/高內(nèi)涵檢測的方法,獲得海量數(shù)據(jù),進(jìn)行大數(shù)據(jù)比對分析,建立網(wǎng)絡(luò)集成式細(xì)胞內(nèi)特征的公共數(shù)據(jù)庫,為人類對疾病的了解、新藥研發(fā)及個性化治療提供有力的數(shù)據(jù)支撐和手段。
 
美國國立衛(wèi)生研究院NIH正在進(jìn)行的建立網(wǎng)絡(luò)集成式細(xì)胞內(nèi)特征的公共數(shù)據(jù)庫(LINCS)項目,旨在開發(fā)細(xì)胞水平上藥物特性的生物學(xué)標(biāo)簽,通過監(jiān)視細(xì)胞內(nèi)表型的變化動態(tài)反映藥物作用機(jī)制,使我們能迅速了解個體細(xì)胞的藥物功能基因組學(xué)和藥物代謝組學(xué)的特征。
 
Cellarium(A Live-Cell Microarray for High-Throughput Observation of Metabolic Biosignatures) 技術(shù)是以NIH NHGRI(National Human Genome Research Institute)CEGS(Center of Excellence in Genomic Sciences)Microscale Life Sciences Center開發(fā)的技術(shù)衍生出來的,隸屬于上述NIH LINCS項目的一部分。這種技術(shù)通過單細(xì)胞代謝分析,致力于開發(fā)單細(xì)胞水平的藥物特性的代謝圖譜。The LINCS Tech U01 可以支持新一代高通量系統(tǒng)的發(fā)展并將數(shù)據(jù)儲存到LINCS數(shù)據(jù)庫中。利用ImageXpress® Micro 高內(nèi)涵分析系統(tǒng)可實現(xiàn)快速的高分辨率圖像采集,以得到單細(xì)胞水平上反應(yīng)細(xì)胞各種生物特征的數(shù)據(jù)分析和處理。
 
在美國NIH LINCS項目中,利用高內(nèi)涵成像分析技術(shù)平臺可獲得單個細(xì)胞水平的各種生物學(xué)特征,如固定細(xì)胞中蛋白的免疫檢測、活細(xì)胞凋亡圖像分析、蛋白激酶生化分析以及細(xì)胞活力相關(guān)的生理參數(shù),為研究者和臨床診斷醫(yī)生探測單細(xì)胞個體分析和如何用藥提供了一個獨特的工具。
 
流程圖
圖1概括了cellarium 技術(shù)的工作流程。首先,將細(xì)胞種到微孔中并在正常條件下進(jìn)行培養(yǎng)(在孵育之前,要先加入實驗需要的各種刺激因子)。將傳感器微陣列壓在細(xì)胞微孔陣列上后,就完成了單細(xì)胞分離和密封的步驟了。然后,在一個精確的時間段內(nèi)對芯片進(jìn)行高速掃描就可以得到相應(yīng)的參數(shù)包括耗氧率,胞外pH變化以及糖攝取狀況等。這些數(shù)據(jù)與癌細(xì)胞代謝,正常細(xì)胞生長發(fā)育以及一系列的人類疾病相關(guān)。此外,胞內(nèi)的熒光傳感器可以擴(kuò)大檢測參數(shù)的范圍,其中包括ATP等,通過高內(nèi)涵圖像采集及分析系統(tǒng)將單細(xì)胞熒光圖像存儲并分析,得到大量單細(xì)胞生理參數(shù)。這些數(shù)據(jù)被整理并上傳到LINCS公共數(shù)據(jù)庫中,供所有的研究者查閱。
 
分離單細(xì)胞傳感器微陣列
 
傳統(tǒng)的大量細(xì)胞群體的生理特征測量只是細(xì)胞對刺激的平均反應(yīng),科研工作者們希望測量單個細(xì)胞水平上的生理參數(shù),以研究細(xì)胞代謝、異質(zhì)性及疾病發(fā)生早期。近期研究的單細(xì)胞代謝大部分基于熒光傳感器系統(tǒng),因為這種系統(tǒng)是非侵入性的、一次性的、可遠(yuǎn)程遙控的測量生化參數(shù)的方法。
 
應(yīng)用化學(xué)方法可成功制造出各種尺寸的的圓點傳感器,小至3微米,且成功率超過90%(圖2)。以耗氧率傳感器為例,設(shè)計出了“l(fā)id-on-top”樣式的微室,微室頂部的“l(fā)id”部分按已設(shè)計好的圖案放置傳感器;細(xì)胞生長于微孔底部,微孔的直徑是固定的,在50-100微米之間,因此放置傳感器的圖形要經(jīng)過精確的計算以達(dá)到高信噪比。lid”部分安放在PDMS(polydimethylsiloxane)材料的活塞上,蓋上活塞時機(jī)械力可在包含傳感器的”lid”和芯片底部的細(xì)胞之間產(chǎn)生密封效果。當(dāng)光從芯片下方照射時,測量并記錄傳感器激發(fā)強(qiáng)度,且此強(qiáng)度與微室中氧濃度有對應(yīng)關(guān)系,經(jīng)過計算就可得到氧氣濃度(圖3)。
 
                  
圖2 Lid-on-top結(jié)構(gòu)示意圖。傳感器按一定圖案放置于頂部的lid,將有細(xì)胞的微室底部分成更小的范圍,形成單細(xì)胞區(qū)域。
 
              
圖3 單細(xì)胞耗氧率動態(tài)代謝檢測及分析
 
一步染色法檢測細(xì)胞對藥物的敏感性
 
應(yīng)用ImageXpress® Micro高內(nèi)涵成像系統(tǒng)可快速、方便、高通量的測量細(xì)胞對小分子藥物的多參數(shù)生理變化,并且使用三種熒光染料對活細(xì)胞進(jìn)行染色,只需一步,無需清洗,對于貼壁性不好的有絲分裂細(xì)胞和凋亡細(xì)胞,這種方法比傳統(tǒng)的基于免疫熒光染色的方法更加準(zhǔn)確。應(yīng)用此法得到的數(shù)據(jù)已經(jīng)上傳到NIH的LINCS公共數(shù)據(jù)庫中()。
 
在傳統(tǒng)免疫熒光法和一步熒光染料法的對比實驗中,免疫熒光法用phospho(Ser10) Histone H3標(biāo)記有絲分裂細(xì)胞,antcleaved PARP1標(biāo)記凋亡細(xì)胞。染料法用LysoTracker-Red顯示細(xì)胞形態(tài),DEVDNucView488 caspase-3標(biāo)記凋亡細(xì)胞。兩種方法均用Hoechst 33342標(biāo)記細(xì)胞核。免疫熒光法是將細(xì)胞固定后進(jìn)行抗體染色步驟,包括沖洗板子,而熒光染料法是染色后再固定細(xì)胞,并且在采集圖像前沒有沖洗的步驟。
 
實驗中用典型的抗有絲分裂藥物紫杉醇處理人膀胱癌5637細(xì)胞(圖4)。在無藥物的對照組,這兩種實驗方法的結(jié)果十分相近,包括細(xì)胞密度、細(xì)胞核形態(tài)、%有絲分裂、%凋亡細(xì)胞。在紫杉醇處理24小時后,兩種實驗方法中的有絲分裂細(xì)胞數(shù)均顯示出明顯增加。但是,凋亡細(xì)胞數(shù)在免疫熒光法中明顯少于熒光染料法。這說明免疫熒光法沖洗板子的過程雖然可以有效的保留有絲分裂細(xì)胞,但會使凋亡細(xì)胞損失。為了證明這一結(jié)論,我們用紫杉醇處理細(xì)胞48小時后,用熒光染料法染色,先按正常程序不沖洗,采集下圖像后,再用PBS沖洗三次模擬免疫熒光法,采集同樣位置的圖像,沖洗前后的圖像對比如圖4C所示。沖洗后,NucView488陽性細(xì)胞大量減少,另外,洗前的圖像中有很多圓形、脹大、模糊的被LysoTracker-Red和NucView488染色很弱的核,而在沖洗后這些核完全丟失了。從細(xì)胞形態(tài)及染色情況看,這些應(yīng)屬于晚期凋亡細(xì)胞。
 
接下來我們評估了熒光染色高內(nèi)涵法的自動表型算法(圖5)。5637細(xì)胞分別經(jīng)過DMSO、200nM紫杉醇處理24小時、200nM紫杉醇處理48小時。不同表型的細(xì)胞被不同顏色輪廓標(biāo)記出來:分裂間期細(xì)胞為白色,有絲分裂細(xì)胞為紅色,早期凋亡細(xì)胞為綠色,晚期凋亡細(xì)胞為黃色。為了評估自動分析的準(zhǔn)確性,我們從每種處理中隨意挑選了12張圖片進(jìn)行手動計數(shù),作為標(biāo)準(zhǔn)與自動分析結(jié)果進(jìn)行比較。結(jié)果顯示兩種計算方法非常相近,雖然自動分析中間期細(xì)胞數(shù)量略高,有絲分裂和凋亡細(xì)胞數(shù)量略低,但是誤差很小,并不影響藥物評價。
 
圖4 人類膀胱癌5637細(xì)胞基于抗體和基于染料的實驗對比。(A)基于抗體和基于染料的實驗中單一通道和疊加圖像的對比,DMSO對照(左)和200nM紫杉醇(右)處理24小時。(B)柱狀圖顯示了兩種實驗方法在DMSO和200nM紫杉醇處理24小時處理后的對比,對比參數(shù)包括總細(xì)胞數(shù)、有絲分裂細(xì)胞數(shù)和凋亡細(xì)胞數(shù)。所有的細(xì)胞計數(shù)都是每孔統(tǒng)計了超過4個視野,并取超過48個重復(fù)孔的平均值得到的。(C)細(xì)胞被200nM紫杉醇處理48小時后用染料染色,對比實驗孔板在沖洗前后同一位置單一通道和疊加圖像。
 
               
圖5 染色實驗方法的圖像自定義分析分割結(jié)果。5637細(xì)胞在DMSO、200nM紫杉醇處理24小時和200nM紫杉醇處理48小時后的原始圖像(上)和Hoechst分析圖像(下)。分裂間期細(xì)胞為白色,有絲分裂細(xì)胞為紅色,早期凋亡細(xì)胞為綠色,晚期凋亡細(xì)胞為黃色。(B)自動分析(藍(lán)色)和手工計數(shù)(紅色)的比較,依次為總細(xì)胞數(shù)、有絲分裂細(xì)胞數(shù)、凋亡細(xì)胞數(shù)和晚期凋亡細(xì)胞數(shù)。所有的細(xì)胞數(shù)均為超過12個圖像的平均值。
 
單細(xì)胞分析的未來
 
目前科學(xué)界認(rèn)為,如果能深入了解單細(xì)胞的行為以及它們和微環(huán)境的相互作用,就能衍生出很多具有沖擊性的發(fā)現(xiàn)。從近來的綜述性文章我們可以發(fā)現(xiàn),研究單細(xì)胞分析技術(shù)尤其是從傳統(tǒng)細(xì)胞研究方法向高通量單細(xì)胞分析方法轉(zhuǎn)變是必要的。
LINCS項目不僅擁有全新的高通量平臺測序技術(shù)及平臺,包括ImageXpress® Micro高內(nèi)涵成像分析系統(tǒng)等,使之可以準(zhǔn)確找到如單細(xì)胞代謝率的生物學(xué)標(biāo)簽的實時信號改變;更重要是在于對進(jìn)行大規(guī)模數(shù)據(jù)庫的建立和大數(shù)據(jù)的分析,使我們在后基因組時代進(jìn)一步加快了轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白組學(xué)及單細(xì)胞代謝組學(xué)等的發(fā)展。LINCS技術(shù)得到的海量數(shù)據(jù)信息和分析比對結(jié)果將極大影響人類對生命科學(xué)的研究及對人類疾病的了解,從而進(jìn)一步改善人類的環(huán)境、醫(yī)療及健康狀況。與此同時,也為制藥/診斷公司提供了一個商業(yè)契機(jī),可以利用LINCS技術(shù)平臺為研究者或臨床醫(yī)生提供更為準(zhǔn)確可靠的生物學(xué)數(shù)據(jù)或個性化的診斷數(shù)據(jù)。
 
來源:美谷分子儀器(上海)有限公司
聯(lián)系電話:021-24197251
E-mail:info.china@moldev.com

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