1.前言
循環(huán)游離核酸(circulating cell-free nucleic acids)是指存在于人體循環(huán)系統(tǒng)中,游離于細胞外的微量內(nèi)源性或外源性核酸片段,包括核DNA、線粒體DNA(mitochondrial DNA,mitDNA)、病毒DNA、信使RNA(messenger RNA, mRNA)及微小RNA(microRNA, miRNA)等。 1948年, Mandel等[1] 首次發(fā)現(xiàn)了血液循環(huán)中游離DNA的存在。隨后,循環(huán)游離核酸在病理狀態(tài)下的特異性變化引起了廣泛關(guān)注。雖然這一發(fā)現(xiàn)十分重大,但當時并未引起人們的廣泛關(guān)注,并且在此后的很長一段時間里,人們也僅局限于研究游離 DNA 與人類自身免疫病之間的關(guān)系。 1975 年, Steinman 在健康人的血漿中也發(fā)現(xiàn)有游離形式的核酸存在,這提示我們這種核酸的出現(xiàn)屬于病理學事件,而非病因?qū)W事件,但健康人血漿中游離 DNA 的量要顯著低于患有一定疾病的人。 1977年, Leon等[2] 發(fā)現(xiàn)腫瘤患者血清中的游離DNA水平較健康人群明顯升高,并與腫瘤的進展與預(yù)后相關(guān)。 1997年,人們發(fā)現(xiàn)在孕婦血漿中含有游離形式的胎兒源的 DNA,這使得血漿游離核酸的研究在胎兒出生前診斷方面的應(yīng)用也有了快速的發(fā)展。 1989年, Stroun等[3] 發(fā)現(xiàn)腫瘤患者血液中的游離核酸含有與腫瘤細胞相同的基因突變,F(xiàn)如今,游離核酸與腫瘤、妊娠相關(guān)性疾病、自身免疫病、移植排斥反應(yīng)、創(chuàng)傷、急救醫(yī)學等有著密切關(guān)系,其檢測對疾病的早期診斷、分期、監(jiān)測、預(yù)后判斷等有重要意義。
鑒于游離核酸的重要檢測意義,游離核酸的保存條件則直接決定了檢測結(jié)果的可靠性。為確保游離核酸標本檢測的準確性, 本文采用了市面上常用的不同品牌游離核酸保存管,就保存效果進行了比較。
2 材料與方法
2. 1 材料
2.1.1 保存管及分組
(1) E 組:普通抗凝采血管(主要成分 EDTA·2Na);
(2) S 組: Cell-Free DNA BCT(品牌: S 公司, REF.2***52);
(3) B 組: Cell-Free DNA Storage Tube 10mL(品牌:百泰克, REF. ST2001);
(4) K 組: Cell-Free DNA Storage Tube 10mL(品牌: K 公司, Cat. CW***6S)。2.1.2 血液樣本
健康人血 10ml。
2.1.3 試劑及設(shè)備
(1) Premix EX Taq (TaKaRa,Cat.RR390A);
(2)探針及引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;
(3) Qubit dsDNA HS Assay Kit(Invitrogen by Thermo Fisher Scientific);
(4) Beta-actin 質(zhì)粒由上海捷瑞生物工程有限公司合成;
(5) BioRad-CFX96(BIO-RAD, Foster city, California, USA), Qubit 2.0 Fluorometer (Life Technologies, USA), Mili-Q Advantage A10, SHZ-82A 恒溫振蕩器(常州醫(yī)療器件廠) 。
2.2 方法
2.2.1 血液樣本采集
采用標準靜脈穿刺采集年齡 22-40 歲健康人血 10ml,各組年齡差異無統(tǒng)計學意義(P<0.05) ,分別裝于采血管及保存管。
2.2.2 血漿分離方法
輕柔上下顛倒混勻 10 次, 800×g, 20min,轉(zhuǎn)移上層血漿至 1.5ml 離心管; 16,000×g,室溫, 10min,轉(zhuǎn)移上層血漿至 1.5ml 離心管凍存-80℃?zhèn)溆谩L崛∮坞x核酸前,室溫解凍,16,000×g, 5min,吸取上層血漿,進行游離核酸提取。
2.2.3 游離核酸提取方法
根據(jù) QIAamp Circulating Nucleic Acid Handbook 試劑盒操作說明操作。
2.2.4 Qubit 熒光計定量血漿游離 DNA 的濃度
采用 Qubit 2.0 熒光計定量血漿游離 DNA 的濃度。
2.2.5 Beta-actin 拷貝數(shù)的檢測
Beta-actin 10 倍梯度稀釋 107-101,引物分別分 actin-F1, actin-R1,探針為 probe actin,引物及探針工作濃度為 5 uM, 20ul 熒光定量體系引物加入量為各 1ul。擴增程序為 50° C、 5min, 95° C、 10min,循環(huán) 50 次, 95° C、 20s, 65° C、 20s,72° C、 10min, 結(jié)束。
擴增程序試劑組成:
Reagent 體積(ul)
Takara Premix 10
Primer F 1
Primer R 1
Probe 1
模板 1
ddH2O 補足 20ul
3 結(jié)果
3.1 不同天數(shù)下(25°C)游離核酸保存效果的對比
分別用 3 種不同的保存管(E、 S 及 B)采集血液 10ml,顛倒混勻 15 次后立即等分 4份至無抗凝劑無促凝劑的玻璃采血管中,保存條件為 25°C。分別于保存第 0、 3、 7、 14 天時分離血漿,提取游離核酸。
圖 1 顯示: 保存第 7 天和第 14 天, E 組出現(xiàn)明顯的溶血現(xiàn)象,并隨時間的延長更加嚴重;S 品牌產(chǎn)品保存的血液第 7 天略微有溶血現(xiàn)象,第 14 天時,溶血嚴重。相比之下, B 品牌產(chǎn)品效果較佳。
圖2 顯示: 25°C條件下, E產(chǎn)品在第0天時,基因組基本無釋放; 第3、 7、 14天的核酸量隨時間延長,基因組釋放量增加明顯; 第14天的核酸檢測量是第0天的至少2500倍。 B產(chǎn)品的保存效果在14天之內(nèi),基本能夠抑制基因組的釋放; 第14天的檢測結(jié)果為第0天的1.77倍。 S品牌產(chǎn)品7天之內(nèi),能夠保持cfDNA穩(wěn)定,基本無基因組釋放;但第14天檢測量劇增,是第0天的2200倍。
圖 3 顯示: Beta-actin 絕對定量結(jié)果趨勢與 Qubit 結(jié)果基本一致,室溫 25°C 保存 3 天, 3 種保存管的差異不顯著;保存第 7 天時, E 與 B 組間的 P Value<0.01, 差異極顯著, B 與 S 組 0.01
圖 4Qubit 結(jié)果顯示: 三種保存管 7 天內(nèi)保存效果無明顯差異, 14 天時, K 組與 S 組保存管均出現(xiàn)明顯的上升,分別是第 0 天的 15.27 倍和 10.21 倍, 21 天時,上升最為明顯,分別是第 0天的 22.46 倍和 13.84 倍。 B 組保護劑保存的血液在第 0、 3、 7、 14、 21、 28 天檢測時, 每毫升血液 cf-DNA 濃度均無明顯的上升。
圖 5Beta-actin 絕對定量結(jié)果與圖 4 基本一致。 B2 組保護劑保存的血液在第 0、 3、 7、 14、21、 28 天檢測時, 每毫升血液 Beta-actin 拷貝數(shù)均無明顯的上升。
3.2 不同天數(shù)下(4°C)游離核酸保存效果的對比
圖 6Qubit 結(jié)果顯示: 在 4°C 情況下, 三種保存管 0-14 天的每毫升血液 cf-DNA 濃度并無明顯的差異。
圖 7Beta-actin 結(jié)果顯示:在 4°C 情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 Beta-actin 拷貝數(shù)并無明顯的差異。
3.3 不同天數(shù)下(37°C)游離核酸保存效果的對比
圖 8Qubit 結(jié)果顯示:在 37°C 情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 cf-DNA 濃度并無明顯的差異。
圖 9Beta-actin 結(jié)果顯示:在 37°C 情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 Beta-actin拷貝數(shù)并無明顯的差異。
3.4 運輸環(huán)境(25°C)對游離核酸保存效果的影響
考慮到保存管有可能應(yīng)用于樣品的長途或短途運輸,因此需用搖床模擬運輸環(huán)境對保護劑抑制細胞破裂的影響。 S 組、 K 組及 B 組分別采集血液一份,搖床設(shè)置 180rpm, 25°C,分別在 0、 3、 7、 14 天檢測核酸濃度和 beta-actin 拷貝量。
圖 10Qubit 結(jié)果顯示:在 25°C 模擬震蕩情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 cf-DNA濃度并無明顯的差異。
圖 11Beta-actin 結(jié)果顯示:在 25°C 模擬震蕩情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液Beta-actin 拷貝數(shù)并無明顯的差異。
4.討論
(1)從每毫升血液 Beta-actin拷貝數(shù)及每毫升血液 cf-DNA濃度兩個方面來驗證 cf-DNA完整性,已在多篇文獻中[4][5]得到驗證。
(2) 室溫 25°C 下,保存 3 天時, 3 種保存管的差異不顯著;保存第 7 天時, E 與 B 組間的差異極顯著, B 與 S 組差異具有顯著性;保存第 14 天時, B 與 S 組 P value<0.01,差異極顯著。 在室溫 25°C 下, B 組較 S 組及 E 組,保存時間較長,效果較佳。
(3)室溫 25°C 下,三種保存管 7 天內(nèi)保存效果無明顯差異, 14 天時, K 組與 S 組保存管均出現(xiàn)明顯的上升,, 21 天時,上升最明顯。 B 組保護劑保存的血液在第 0、 3、 7、 14、 21、 28 天檢測時,每毫升血液 cf-DNA 濃度均無明顯的上升。 在室溫 25°C 下, B 組較 S 組及 K 組,保存時間較長,效果較佳。
(4)在 4°C 情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 Beta-actin 拷貝數(shù)及每毫升血液 cf-DNA濃度并無明顯的差異。 在 4°C 下, B 組、 S 組及 K 組,保存效果無明顯差異。
(5)在 37°C 情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 Beta-actin 拷貝數(shù)及每毫升血液 cf-DNA濃度并無明顯的差異。 在 37°C 下, B 組、 S 組及 K 組,保存效果無明顯差異。
(6) 在 25°C 模擬震蕩情況下,三種保存管 0-14 天的每毫升血液 Beta-actin 拷貝數(shù)及每毫升血液cf-DNA 濃度并無明顯的差異。 在 25°C 模擬震蕩情況下, B 組、 S 組及 K 組,保存效果無明顯差異。
5.參考文獻
[1]MANDEL P, MéTAIS P. Les acides nucléiques du plasma sanguin chez l’homme [J] . C R Acad Sci Paris, 1948,142: 241-243.
[2]LEON S A, SHAPIRO B, SKLAROFF D M, et al. Free DNA in the serum of cancer patients and the effect of therapy [J] .Cancer Res, 1977, 37(3): 646-750.
[3]STROUN M, ANKER P, MAURICE P, et al. Neoplastic characteristics of the DNA found in the plasma of cancer patients[J] . Oncology, 1989, 46(5): 318-322.
[4]Norton S E, Lechner J M, Williams T, et al. A stabilizing reagent prevents cell-free DNA contamination by cellular DNA in plasma during blood sample storage and shipping as determined by digital PCR[J]. Clinical Biochemistry, 2013, 46(15):1561-5.
[5] Ryan W L, Fernando R M, Das K. BLOOD COLLECTION DEVICE FOR STABILIZING CELL-FREE PLASMA DNA:, WO 2013123030 A3[P]. 2013.