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支原體檢測試劑盒說明書(QPCR法)

瀏覽次數(shù):589 發(fā)布日期:2023-8-1  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
【產(chǎn)品規(guī)格】
BPM50 50 次/盒
【產(chǎn)品說明】
支原體(mycoplasma):目前發(fā)現(xiàn)的最小的原核生物,據(jù)統(tǒng)計約 15~35% 的細(xì)胞被支原體污染。支原體污染會改變宿主細(xì)胞的結(jié)構(gòu)與功能,易致實驗結(jié)果不穩(wěn)定,須對培養(yǎng)細(xì)胞定期進(jìn)行支原體檢測。
本產(chǎn)品試劑盒采用雙色熒光 qPCR (TaqMan 探針法)檢測支原體DNA,檢測對象為細(xì)胞培養(yǎng)的上清液或細(xì)胞本身。該試劑盒具有以下特點:
靈敏:配合高效 DNA 提取試劑盒,檢測靈敏度達(dá) 10cfu/mL。
穩(wěn)定:全程閉管操作,無交叉污染。
可靠:含內(nèi)參基因,避免假陰性。
方便:操作簡單,無需電泳步驟。
定量:以 CT 值判斷,可定量檢測。
【運輸及保存條件】
低溫冷凍運輸, -20℃保存,有效期 1 年。
【產(chǎn)品組分】
組分名稱 BPM50
Mycoplasma Probe qPCR SuperMix  900µL
Mycoplasma Positive Control  100µL
RNase Free Water  100µL
注:Positive Control 濃度為 2×10 3拷貝/µL。本試劑盒提供試劑,使用前先低速離心后小心開啟。使用時請上下輕柔顛倒十次混勻,避免起泡,并低速短暫離心后使用。
【操作步驟】
1. 樣本制備(自備)
A 樣本的標(biāo)準(zhǔn)制備方案:請使用高效DNA 提取試劑盒取樣本 DNA。推薦使用無微生物污染級別的核酸提取試劑盒。低溫保存的血清、臍帶血、胰酶、抗生素、未使用的培養(yǎng)液等生物制品,即使存在支原體污染,一般支原體含量也較少,建議提取樣本DNA 后檢測。
B 樣本的簡易快速制備方案:可用于細(xì)胞培養(yǎng)上清、細(xì)胞懸液、血液,樣本制備步驟如下。
(1) 細(xì)胞培養(yǎng)上清:取 1~1.5mL 細(xì)胞培養(yǎng)上清;
(2) 細(xì)胞懸液:直接取 2µL 細(xì)胞懸液作為模板進(jìn)行qPCR 反應(yīng)。要求樣本內(nèi)細(xì)胞總數(shù)量不超過 10000 個,樣本可用細(xì)胞培養(yǎng)基稀釋400 rpm 離心 3 分鐘;取 2µL 上清作為模板進(jìn)行qPCR反應(yīng)。
(3) 血液:直接取血液樣本作為模板進(jìn)行 qPCR 反應(yīng)。注意血液中的細(xì)胞對PCR反應(yīng)有較強(qiáng)抑制作用,內(nèi)參檢測通道會顯示異常。根據(jù)不同應(yīng)用場景,有兩個建議:①中間質(zhì)控環(huán)節(jié),對靈敏度要求中等,無需達(dá)到10cfu/mL,可用無菌水稀釋 10 倍,充分混勻后,取 2µL作為模板進(jìn)行 qPCR 反應(yīng)。②放行檢測,要求靈敏度達(dá)到10cfu/mL,建議提取樣本DNA 后檢測。
2. qPCR 反應(yīng)體系及條件
反應(yīng)體系以20µL為例:
PCR 儀設(shè)置以 ABI 7500 為例,相對定量模式,選擇
TaqMan 探針法:
【閾值設(shè)置】
以ABI 7500 為例,擴(kuò)增曲線選擇 log 法,基線設(shè)置3~15 個循環(huán)。建議用 log 法擴(kuò)增曲線保證結(jié)果穩(wěn)定可靠。
(1)內(nèi)參(HEX/VIC)閾值設(shè)定:以陰性對照定內(nèi)參擴(kuò)增曲線閾值,將內(nèi)參的CT 值定為 27±2。
(2)支原體(FAM)閾值設(shè)定:以陽性對照定支原體擴(kuò)增曲線閾值,將支原體(FAM)的CT值定為 26±3。
說明:
如果陽性對照管的支原體(FAM)CT 值>30,但陽性對照管及陰性對照管的內(nèi)參(HEX)CT 值正常,表明陽性支原體對照模板有降解。
如果陰性對照管的內(nèi)參(HEX/VIC)CT值>30,陽性對照管的內(nèi)參(HEX)CT值>30 且支原體(FAM)CT值>30,表明 Mycoplasma Probe qPCR SuperMix 試劑成分已失效。
【結(jié)果判讀】
根據(jù)支原體(FAM) CT 值判定是否發(fā)生支原體污染,具體標(biāo)準(zhǔn)如下:
注:檢測結(jié)果落在灰區(qū)或與其他方法檢測結(jié)果矛盾時:
 
1. 檢查內(nèi)參通道擴(kuò)增是否正常,擴(kuò)增曲線是否選擇log 法。
2. 內(nèi)參擴(kuò)增不正常,表明 PCR 反應(yīng)未正常進(jìn)行,PCR 體系受到干擾,需重復(fù)檢測
3. 內(nèi)參擴(kuò)增正常,結(jié)合 CT值和擴(kuò)增曲線形態(tài)判斷。
4. 無典型擴(kuò)增曲線,可認(rèn)為該樣本為支原體陰性。
5. 有典型擴(kuò)增曲線,需重復(fù)檢測。重復(fù)結(jié)果不一致判為陰性;結(jié)果一致,判為弱陽性。
【注意事項】
由于 PCR 反應(yīng)非常靈敏,實驗操作中應(yīng)注意以下事項,以免發(fā)生DNA 污染:
1. 建議陽性對照與待測樣本、陰性對照在實驗室的不同區(qū)域進(jìn)行添加,在 qPCR 反應(yīng)板上陽性對照的排布應(yīng)遠(yuǎn)離待測樣本和陰性對照。
2. 建議使用不同的移液器添加陽性對照與待測樣本、陰性對照,并使用帶濾芯的槍頭進(jìn)行加樣。
3. 試劑盒開啟后,陽性對照應(yīng)與試劑 Mix、陰性對照分開存放。
4. qPCR 封膜時須反復(fù)壓緊。
5. 實驗室環(huán)境須定期清除支原體
來源:上海松茸生物科技有限公司
聯(lián)系電話:13186035756
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