大鼠I型膠原N末端肽(NTX)ELISA試劑盒
(用于血清、血漿、細胞培養(yǎng)上清液和生物體液內(nèi))
原理
本實驗采用雙抗體夾心 ABC-ELISA法。用抗大鼠 NTX 單抗包被于酶標板上,標準品和樣品中的 NTX與單抗結(jié)合,加入生物素化的抗大鼠NTX,形成免疫復(fù)合物連接在板上,辣根過氧化物酶標記的Streptavidin與生物素結(jié)合,加入底物工作液顯藍色,最后加終止液硫酸,在450nm處測OD值,NTX濃度與OD值成正比,可通過繪制標準曲線求出標本中NTX濃度。
試劑盒組成(2-8℃保存)
酶標板(Coated Wells) |
96孔 |
酶標抗體工作液(Enzyme Conjugate) |
12ml |
10×標本稀釋液(Sample Buffer) |
12ml |
20×濃縮洗滌液(Wash Buffer) |
50ml |
標準品(Standards):0.4nmol/瓶 |
2瓶 |
底物工作液(TMB Solution) |
12ml |
第一抗體工作液(Biotinylated Antibody) |
12ml |
終止液(Stop Solution) |
12ml |
準備試劑與收集血樣
1. 收集標本:血清、血漿(EDTA、檸檬酸鹽、肝素抗凝)、細胞培養(yǎng)上清液、組織勻漿等盡早檢測,2-8℃保存48小時;更長時間須冷凍(-20 ℃或-70 ℃)保存,避免反復(fù)凍融。
2. 標準品液配制:使用前加入1ml蒸餾水混勻,配成400nmol/L的溶液。設(shè)標準管8管,每管加入標本稀釋液300ul。在第一管中加入400 nmol/L的標準品溶液300ul混勻后用加樣器吸出300ul,移至第二管。如此反復(fù)作對倍稀釋,從第七管中吸出300ul棄去。第八管為空白對照。
3. 10×標本稀釋液用蒸餾水作1:10倍稀釋(示例:1ml濃稀釋液+9ml蒸餾水)。
4. 洗滌液:用重蒸水1:20稀釋(示例:1ml濃縮洗滌液加入19ml的重蒸水)
檢測程序
1. 加樣:每孔各加入標準品或待測樣品100ul,將反應(yīng)板充分混勻后置37℃120分鐘。
2. 洗板:用洗滌液將反應(yīng)板充分洗滌4-6次,向濾紙上印干。
3. 每孔中加入第一抗體工作液100ul。將反應(yīng)板充分混勻后置37℃60分鐘。
4. 洗板:同前。
5. 每孔加酶標抗體工作液100ul。將反應(yīng)板置37℃30分鐘。
6. 洗板:同前。
7. 每孔加入底物工作液100ul,置37 ℃暗處反應(yīng)15分鐘。
8. 每孔加入100ul終止液混勻。
9. 30分鐘內(nèi)用酶標儀在450nm處測吸光值。
結(jié)果計算與判斷
1. 所有OD值都應(yīng)減除空白值后再行計算。
2. 以標準品200、100、50、25、12.5、6.25、3.12、0 nmol/L為橫坐標,OD值為縱坐標,在坐標紙上作圖,畫出標準曲線。
3. 根據(jù)樣品OD值在該曲線圖上查出相應(yīng)NTX含量。
試劑盒性能
1. 靈敏度:最小的NTX 檢測濃度小于1.5nmol/L。
2. 特異性:可同時檢測重組或天然的大鼠NTX。不與大鼠其它細胞因子有交叉反應(yīng)。
3. 重復(fù)性:板內(nèi)、板見變異系數(shù)均小于10.2%。
注意事項
1. 以上標準孔及待測樣品均建議做復(fù)孔,每次測定應(yīng)同時做標準曲線。
2. 洗滌過程很關(guān)鍵。洗滌不充分將導(dǎo)致精確度誤差及OD值錯誤地升高。
3. 板條開封后剩余板條要再封好,保持板條干燥。
4. 本試劑盒宜置4oC冰箱保存。
5. 本試劑盒僅用于科研,不能用于臨床診斷!