PCR產(chǎn)物的TA克隆
實驗原理
1. DNA片段回收方法：DNA片段在適當濃度的瓊脂糖凝膠中，通上一定電壓進行電泳，不同大小的DNA分子由于遷移率的不同而分離開。切下帶有所需DNA片段的凝膠，用凍融法、玻璃奶回收法或商品化膠回收試劑盒將目的片段回收純化。
2. 利用Taq酶能夠在PCR產(chǎn)物的3’末端加上一個非模板依賴的A，而T載體是一種帶有3’T突出端的載體，在連接酶作用下，可以把PCR產(chǎn)物插入到質(zhì)粒載體的多克隆位點，可用于PCR產(chǎn)物的克隆和測序。
實驗試劑
1. pMDTM18-T Simple Vector Kit(Takara公司)
2. TAE電泳緩沖液
3. 瓊脂糖(Agarose)
4. 6×電泳加樣緩沖液：0.25％溴粉藍，40％(w/v) 蔗糖水溶液，貯存于 4℃。
5. 溴化乙錠(EB)溶液母液：配制成10mg/mL，用鋁箔或黑紙包裹容器，儲于室溫即可。
6. 70%乙醇
7. 膠回收試劑盒(Omega公司)
實驗設(shè)備
1. 水平式電泳裝置
2. 電泳儀
3. 臺式高速離心機
4. 恒溫水浴鍋
5. 微量移液槍
6. 微波爐或電爐
7. 紫外透射儀
8. 凝膠成像系統(tǒng)或其它照相設(shè)備
實驗步驟
1. 膠回收試劑盒回收PCR產(chǎn)物(以O(shè)mega公司 Gel Extraction Kit為例)
1) 當目的片段DNA完全分離時，轉(zhuǎn)移凝膠至紫外燈上盡可能快地切下目的片段。
2) 凝膠塊轉(zhuǎn)移至1.5ml離心管(離心管已經(jīng)稱重了)中，稱重得出凝膠塊的重量。近似地確定其體積(假設(shè)其密度為1g/ml)。加入等體積的Binding Buffer(XP2)，于55-65℃水浴中溫浴7min或至凝膠完全融化，每2-3 min振蕩混合物。(在凝膠完全溶解之后，注意凝膠-Binding buffer混和物的pH值。如果其pH值大于8的話，DNA的產(chǎn)量將大大減少。如果是橙色或紅色，則要加入5μl 濃度為5 M，pH為5.2的醋酸鈉，以調(diào)低其pH值。該混合物的顏色將恢復為正常的淺黃色。)
3) 取一個干凈的HiBind DNA Mini柱子裝在一個干凈的2ml收集管內(nèi)(已備好)。
4) 將第三步獲得的DNA/熔膠液全部轉(zhuǎn)移至柱子中。室溫下10,000 x g離心1分鐘。棄收集管中的濾液，將柱子套回2ml收集管內(nèi)收集管。
5) 如果DNA/凝膠熔液的體積超過700ul，一次只能轉(zhuǎn)移700ul至柱子中，余下的可繼續(xù)重復第5步至所有的溶液都經(jīng)過柱子。每一個Hibind DNA回收純化柱都有一個極限為25μg DNA的吸附能力。如果預期產(chǎn)量較大，則把樣品分別加到合適數(shù)目的柱子中。
6) 棄收集管中的濾液，將柱子套回2ml收集管內(nèi)收集管。轉(zhuǎn)移300μl Binding Buffer(XP2)至柱子中，室溫下， 10,000 x g下離心1min。
7) 棄收集管中的濾液，將柱子套回2ml收集管內(nèi)收集管。轉(zhuǎn)移700μl SPW Wash buffer(已用無水乙醇稀釋的)至柱子中。室溫下10,000xg離心1min。(濃縮的SPW Wash Buffer在使用之前必須按標簽的提示用乙醇稀釋。如果DNA洗滌緩沖液在使用之前是置于冰箱中的，須將其拿出置于室溫下)。
8) 重復用700μl SPW Wash buffer洗滌柱子。室溫下10,000xg離心1min。
9) 棄收集管中的濾液，將柱子套回2ml收集管內(nèi)收集管。室溫下,13,000 x g離心2 min以甩干柱子基質(zhì)殘余的液體。
10) 把柱子裝在一個干凈的1.5ml離心管上，加入15~30μl(具體取決于預期的終產(chǎn)物濃度)的Elution Buffer(或TE緩沖液)到柱基質(zhì)上，室溫放置1min, 13,000xg離心1min以洗脫DNA。第一次洗脫可以洗出70-80%的結(jié)合DNA。如果再洗脫一次的話，可以把殘余的DNA洗脫出來，不過那樣的濃度就會較低。
2. 連接反應(yīng)(以Takara公司pMDTM18-T Simple Vector Kit為例)
1) 在微量離心管中配制下列DNA溶液，全量為5 μl。
pMDTM18-T Simple Vector 1 μl
Insert DNA 0.1 pmol～0.3 pmol
dH2Oup to 5 μl
2) 加入5 μl(等量)的 Solution I。
3) 16℃反應(yīng)30分鐘。(2 kbp以上長片段PCR產(chǎn)物進行DNA克隆時，連接反應(yīng)時間請延長至數(shù)小時)。
4) 全量(10 μl)加入至100 μl 感受態(tài)細胞中，冰中放置30分鐘。
5) 42℃加熱45秒鐘后，再在冰中放置1分鐘。
6) 加入890 μl LB培養(yǎng)基，37℃振蕩培養(yǎng)60分鐘。
7) 在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB瓊脂平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)，形成單菌落。計數(shù)白色、藍色菌落。
8) 挑選白色菌落，鑒定載體中插入片段的長度大小。
注意事項
1. 使用新鮮的電泳緩沖液TAE Buffer。不要重復使用，其PH的升高會減少產(chǎn)量。
2. 不論采取何種方法回收DNA，在回收過程中，要盡量減少洗脫體積，以便提高收得率和濃度，以方便后續(xù)操作。
3. 從膠上回收DNA時，應(yīng)盡量縮短光照時間并采用長波長紫外燈(300-360nm)，以減少紫外光對DNA的切割。DNA曝露在紫外燈下不能超過30秒。
4. 連接反應(yīng)時間是與溫度密切相關(guān)，因為反應(yīng)速度隨溫度的提高而加快。通�？刹捎�16℃連接4小時為宜，如是平端連接需要適當延長反應(yīng)時間以提高連接效率；在選擇反應(yīng)的溫度與時間關(guān)系時，也要考慮在反應(yīng)系統(tǒng)中其他因素的影響。
5. 連接反應(yīng)的整個過程應(yīng)注意槍頭的潔凈以避免造成對酶的污染，為防止酶活性降低，取酶時應(yīng)在冰上操作且動作迅速。
6. 連接反應(yīng)應(yīng)在25℃以下進行，溫度升高較難形成環(huán)狀DNA，影響連接效率。長片段PCR產(chǎn)物(2kb以上)進行連接時，連接反應(yīng)時間應(yīng)延長至數(shù)小時。
7. 進行克隆時，Vector DNA和Insert DNA的摩爾數(shù)比一般為1:2~10。根據(jù)實驗情況選擇合適的摩爾數(shù)比。
8. 用高效的感受態(tài)細胞(轉(zhuǎn)化效率≥1×108 cfu/μg pUC19)，這樣才可能得到比較理想的陽性克隆。
