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新型超微量染色質(zhì)免疫共沉淀ChIP-seq技術(shù)-Cut&Tag

瀏覽次數(shù):2329 發(fā)布日期:2020-1-12  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

文章導(dǎo)讀
染色質(zhì)免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation , ChIP)是研究蛋白質(zhì)與DNA互作的標(biāo)準(zhǔn)方法。通過(guò)與高通量測(cè)序技術(shù)相結(jié)合,研究者開發(fā)了ChIP-seq技術(shù),從而獲得全基因組范圍內(nèi)與組蛋白、轉(zhuǎn)錄因子等互作的DNA片段信息,目前被廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)錄調(diào)控、表觀遺傳等研究領(lǐng)域。但是ChIP-seq的應(yīng)用存在諸多限制:整個(gè)過(guò)程十分復(fù)雜,實(shí)驗(yàn)重復(fù)性差,需要甲醛交聯(lián),并且高度依賴抗體;此外,為了獲得有效富集信號(hào),需要大量細(xì)胞投入,這使得ChIP-Seq在少量細(xì)胞如早期胚胎細(xì)胞、干細(xì)胞等研究領(lǐng)域力不從心。

新方法、新技術(shù)的革命往往給科學(xué)研究帶來(lái)天翻地覆的變化。近期出現(xiàn)的Cut&Tag將繁復(fù)的ChIP-Seq變成便捷簡(jiǎn)單的操作,為研究DNA-蛋白質(zhì)相互作用提供了有效的工具。2019年4月,弗雷德哈欽森癌癥研究中心的Henikoff博士在國(guó)際知名學(xué)術(shù)期刊Nature Communications上發(fā)表了Cut&Tag技術(shù),與傳統(tǒng)ChIP-Seq方法相比,Cut&Tag技術(shù)方法簡(jiǎn)便易行,信噪比高,重復(fù)性好,需要的細(xì)胞數(shù)量少至60個(gè),且有望將ChIP-Seq做到單細(xì)胞水平,開創(chuàng)了ChIP-seq新革命。小編帶領(lǐng)大家一起來(lái)領(lǐng)略這項(xiàng)前沿技術(shù)的風(fēng)采。

原文鏈接:Cut&Tag for efficient epigenomic profiling of small samples and single cells
發(fā)表期刊:Nature Communications
影響因子:11.878
發(fā)表日期:20190429

1.Cut&Tag原理

ChiTag是Protein A蛋白與Tn5轉(zhuǎn)座酶的融合蛋白,當(dāng)抗體結(jié)合目的蛋白(如轉(zhuǎn)錄因子、組蛋白等)后,Protein A蛋白可直接結(jié)合抗體,攜帶的Tn5轉(zhuǎn)座酶可特異性的切割目的蛋白附近的DNA片段,并將DNA片段連上接頭,文庫(kù)構(gòu)建后進(jìn)行高通量測(cè)序。

圖1 Cut&Tag實(shí)驗(yàn)流程圖

2. Cut&Tag優(yōu)勢(shì)

為證明Cut&Tag技術(shù)的有效性,作者在對(duì)組蛋白H3K27me3進(jìn)行研究時(shí)對(duì)比使用了ChIP-seq、Cut&RUN、Cut&Tag三種方法。從不同角度對(duì)三組數(shù)據(jù)進(jìn)行比較后,發(fā)現(xiàn)Cut&Tag技術(shù)具有顯著優(yōu)勢(shì),具體結(jié)果如下:

(1)背景噪音低

為了直接比較這三種技術(shù),作者將三種方法的數(shù)據(jù)量都設(shè)置為8M Reads,結(jié)果發(fā)現(xiàn)三種方法得出的峰圖相似,但是ChIP-seq的背景噪聲非常高,增加數(shù)據(jù)量到50M Reads時(shí),才能達(dá)到類似的峰圖,因此ChIP-seq需要更大的測(cè)序深度才能將染色質(zhì)特征與背景區(qū)分開。相反,Cut&RUN和Cut&Tag均具有極低的背景噪聲水平,其中Cut&Tag的背景噪音最低。

圖2 三種方法背景噪音比較

(2)信號(hào)值高,靈敏度好

為了量化三種方法的敏感性,作者分別檢測(cè)了三種方法不同測(cè)序深度下峰的富集效率圖,發(fā)現(xiàn)Cut&Tag可以更快地填充低測(cè)序深度的峰,其中約2M Reads相當(dāng)于Cut&RUN的8M Reads或ChIP-seq的20M Reads,結(jié)果表明相同測(cè)序深度下,Cut&Tag檢測(cè)的信號(hào)值更高。同時(shí),作者又分析了相同測(cè)序深度下(8M Reads),峰圖形成的靈敏度,由于ChIP-seq的靈敏度相對(duì)較低,所以作者增加了一個(gè)40M Reads數(shù)據(jù)量下的峰圖,比較后發(fā)現(xiàn)仍舊是Cut&Tag峰圖最顯著,且比ChIP-seq的40M Reads峰圖都高,表明Cut&Tag的靈敏度最高。 

圖3 三種方法信號(hào)強(qiáng)度比較

(3)重復(fù)性好

為了檢測(cè)三種方法的可重復(fù)性,作者分別對(duì)三種方法做了兩次重復(fù)實(shí)驗(yàn),并對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分層聚類相關(guān)矩陣分析,證明了Cut&Tag實(shí)驗(yàn)可重復(fù)性最好。

圖4 三種方法重復(fù)性相關(guān)矩陣 

總結(jié)

Cut&Tag是蛋白質(zhì)-DNA互作關(guān)系研究的新方法,相較于傳統(tǒng)的ChIP-Seq具有以下優(yōu)點(diǎn):所需細(xì)胞量少,背景信號(hào)低,可重復(fù)性好,無(wú)需ChIP級(jí)別抗體等優(yōu)點(diǎn),甚至可用于單細(xì)胞水平測(cè)序。Cut&Tag技術(shù)可從基因組范圍內(nèi)檢測(cè)組蛋白、RNA polymerase II和轉(zhuǎn)錄因子等蛋白質(zhì)結(jié)合的DNA區(qū)端,應(yīng)用于臨床和科研的表觀遺傳學(xué)研究,或是結(jié)合生物信息學(xué)分析,找到轉(zhuǎn)錄因子下游調(diào)控的靶基因,為進(jìn)一步闡明生物學(xué)機(jī)制提供依據(jù)。

云序生物Cut&Tag技術(shù)服務(wù):

Cut&Tag(Cleavage Under Targets and Tagmentation)是蛋白質(zhì)-DNA互作關(guān)系研究的新方法,是新一代超微量ChIP-Seq技術(shù),適用于無(wú)ChIP級(jí)別抗體的蛋白研究。與傳統(tǒng)的ChIP-Seq研究方法相比,該技術(shù)無(wú)需交聯(lián)、超聲打斷、末端抹平和接頭連接等操作,因此具有省時(shí)高效、所需樣品量少、背景信號(hào)低和可重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn),甚至可用于單細(xì)胞水平測(cè)序。Cut&Tag有望將蛋白質(zhì)-DNA互作的研究變成一種類似PCR反應(yīng)的常規(guī)操作,對(duì)基因調(diào)控、表觀遺傳等領(lǐng)域的研究具有革命性的意義。

產(chǎn)品優(yōu)勢(shì)

  • 樣品起始量低:能夠?qū)吧倭繕悠愤M(jìn)行分析

  • 無(wú)需ChIP級(jí)別抗體:無(wú)需提供ChIP級(jí)別抗體

  • 性價(jià)比高:背景噪音低,所需測(cè)序深度少

  • 實(shí)驗(yàn)重復(fù)性好:實(shí)驗(yàn)重復(fù)結(jié)果一致性好

實(shí)驗(yàn)流程

云序生物Cut&Tag實(shí)驗(yàn)流程圖

樣本要求

1)樣品類型:細(xì)胞、組織,其它樣品信息請(qǐng)?jiān)斣?/p>

2)樣品量

細(xì)胞:5×105

組織:5mg

3)樣品保存:細(xì)胞樣品或新鮮組織塊,液氮凍存后,-80℃ 保存。

4)樣品運(yùn)輸:干冰運(yùn)輸。 

云序生物分子互作技術(shù):

云序作為一家依托于高通量測(cè)序的科研服務(wù)公司,除了提供優(yōu)質(zhì)測(cè)序服務(wù),還為客戶提供機(jī)制研究的服務(wù),助力用戶發(fā)表高分文章,其中包括研究蛋白互作的CoIP技術(shù)、RNA與蛋白/RNA互作的RNA pull-down技術(shù)、蛋白與DNA互作的ChIP和ATAC技術(shù),近期更推出了新一代ChIP-seq技術(shù)Cut&Tag,囊括了DNA、RNA和蛋白質(zhì)這三類經(jīng)典大分子互作研究的重要技術(shù)。

云序生物,您身邊的測(cè)序?qū)<遥?/strong>

云序生物相關(guān)產(chǎn)品推薦

Cut&Tag

ChIP測(cè)序

ATAC測(cè)序

RIP測(cè)序

RNA Pull Down

CoIP實(shí)驗(yàn)

云序生物往期回顧

Meers Michael P,Bryson Terri D,Henikoff Jorja G et al. Improved CUT&RUN chromatin profiling tools.[J] .Elife, 2019, 8: undefined.

Meers Michael P,Tenenbaum Dan,Henikoff Steven,Peak calling by Sparse Enrichment Analysis for CUT&RUN chromatin profiling.[J] .Epigenetics Chromatin, 2019, 12: 42.

Org Tõnis,Hensen Kati,Kreevan Rita et al. Genome-wide histone modification profiling of inner cell mass and trophectoderm of bovine blastocysts by RAT-ChIP.[J] .PLoS ONE, 2019, 14: e0225801.

Jia Yunlu,Chng Wee-Joo,Zhou Jianbiao,Super-enhancers: critical roles and therapeutic targets in hematologic malignancies.[J] .J Hematol Oncol, 2019, 12: 77.

Cebola Inês,Pancreatic Islet Transcriptional Enhancers and Diabetes.[J] .Curr. Diab. Rep., 2019, 19: 145.

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