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Celigo成像分析技術在細胞殺傷中的應用

瀏覽次數(shù):2899 發(fā)布日期:2020-9-2  來源:Nexcelom
2018年的諾貝爾生理學或醫(yī)學獎授予了兩位免疫學家,分別是美國的James P Allison和日本的本庶佑教授,以表彰他們的原創(chuàng)發(fā)現(xiàn)推動了免疫學研究的進程,促使了癌癥治療領域革命性新藥物的面世。



如今炙手可熱的PD-1, CAR-T,TCR-T技術等都要歸功于這一偉大發(fā)現(xiàn)及其臨床應用。如果你的工作也和免疫療法相關,是不是像小編一樣也有一丟丟自豪,感覺自己參與見證了人類疾病史上的一次飛躍呢?

雞血打滿了,該好好干活了!

無論名字多么fancy的療法,有沒有用還是得看它能否消滅腫瘤細胞。在體外實驗中,抗體或經(jīng)改造的免疫細胞(效應細胞)對腫瘤細胞(靶細胞)的殺傷是評估療法效價的不可缺少的評判標準之一。多年來,科學家們已開發(fā)出了多種免疫細胞殺傷的檢測方法,小編總結如下:

這些方法原理不同,也各有利弊。比如許多實驗室常用的乳酸脫氫酶 (LDH) 釋放法是通過檢測細胞裂解后釋放到培養(yǎng)基中的LDH來反映細胞的殺傷程度的。然而免疫細胞和腫瘤細胞中都含有LDH,死亡后都會釋放到培養(yǎng)基中,因此酶標儀的讀數(shù)無法特異性地區(qū)分出腫瘤細胞的死亡,結果容易受到死亡的免疫細胞的影響。另外,該方法需設置多組對照,如無釋放組(不加免疫細胞)和最大釋放組(加Triton X-100完全裂解)來確定最低和最高的OD值讀數(shù)。如果對照組和實驗組的細胞鋪板密度不均勻,極易造成誤差,甚至出現(xiàn)實驗組殺傷效率為負數(shù)的奇怪結果。

再比如Luciferase報告基因法,是將Luciferase的基因片段連接在與T細胞激活相關基因 (比如IL-2或NFAT) 的啟動子之后,通過Luciferase的表達來反映T細胞的激活程度。簡言之是在分子水平檢測T細胞的激活。做該實驗需自行改造T細胞或購買改造好的T細胞系,不夠靈活,具有較大的局限性。

列表中的所有方法還有一個共同缺憾,就是看不到細胞。有圖才有有真相,細胞殺傷連個細胞的影子都沒有,光讓咱們相信這些數(shù)字,心里是不是有點虛?實驗失敗了也很難找原因。另外每次實驗只能測一個時間點,想測多個時間點得鋪多塊板,想想就好累!

檢測免疫細胞殺傷有沒有既靠譜又簡單的方法呢?誰說沒有呢?科技的發(fā)展日新月異,小編今天就給大家介紹一下做免疫細胞殺傷的最新方法:

Calcein AM染色法

• Calcein AM是一種可以滲透細胞膜的染料,通常用來檢測真核細胞的存活率

• 在活細胞中,本來不發(fā)熒光的Calcein AM被胞內酯酶水解后轉化為成發(fā)綠色熒光的Calcein

• 在細胞殺傷實驗中,用 Calcein AM標記靶細胞,發(fā)出綠色熒光;效應細胞不染色以示區(qū)別。當靶細胞裂解后,由于胞內的Calcein釋放到培養(yǎng)基中,細胞失去熒光。通過計算綠色熒光細胞的數(shù)量即可得到活靶細胞數(shù)和細胞殺傷效率。

*詳細原理可查閱我司Nexcelom Bioscience和德克薩斯大學MD Anderson癌癥研究院合作發(fā)表的文獻【1】。

這么好的方法當然需要一個強大的檢測儀器來支撐 – Celigo成像細胞定量分析儀

● 明場+四色熒光

● 全孔成像,圖片清晰,適用于6-1536孔板

● 定量分析全孔細胞數(shù)目

● 軟件自帶流式設門分析功能

● 高速同步成像和分析,15分鐘內完成一塊96孔板的免疫殺傷檢測

現(xiàn)在小編就以NK細胞的ADCC(抗體依賴細胞介導的細胞殺傷)為例子來展示用Celigo做免疫細胞殺傷的效果:
 

 

• 全孔成像,分析孔內每一個細胞

• 避免細胞分布不均帶來的局部視野誤差

• 多時間點檢測時,避免因細胞遷移而造成的局部視野前后不一致
 

• 綠色熒光通道展示被Calcein AM標記的靶細胞

• Celigo軟件將細胞圈定,便于用戶查看細胞識別是否準確


 

 • 在不同時間點將板放入Celigo進行檢測

 • 隨著時間的推進,綠色熒光細胞(即活的靶細胞)的數(shù)量逐漸減少

*每孔下方數(shù)字為0小時綠色熒光細胞密度
 

• Celigo軟件自動生成每孔綠色銀光細胞隨時間變化的曲線,各孔殺傷情況一目了然

• 原始數(shù)據(jù)可導出為Excel或GraphPad格式進行后續(xù)分析

t0為0小時;t為檢測時間點;treated為加抗體組;control為未加抗體組
 

• 如上計算公式即可算出每孔的細胞裂解率

• 每孔數(shù)據(jù)都由該孔0小時和檢測時間點的熒光細胞數(shù)相比較得出,不需額外設置對照組,避免了不同孔間鋪板密度的差異造成的誤差

 • 根據(jù)數(shù)據(jù)繪制出細胞裂解曲線

 

• 將明場和綠色熒光圖片疊加,可觀察NK細胞和腫瘤細胞間的相互作用

• 在一定抗體濃度下,隨著時間的推進,NK細胞逐漸在腫瘤細胞周圍聚集,時間越久聚團越明顯,活的腫瘤細胞也越少

• 在相同時間點,隨著抗體濃度的增高,NK細胞逐漸在腫瘤細胞周圍聚集,濃度越高聚團越明顯,活的腫瘤細胞也越少

有了這樣的圖片,你是不是會底氣十足地在組會上匯報:腫瘤細胞真的被免疫細胞殺得片甲不留,此乃我親眼所見!

除了NK細胞, Calcein AM染色法也能運用在PBMC、CIK、中性粒細胞、CAR-T等其他免疫細胞的殺傷。不過呢,Calcein AM也有一個小小缺點,那就是它的熒光半衰期太短,所以該方法只適用于時程較短(< 6小時)的殺傷實驗。如果你的殺傷實驗時程較長也不用擔心,Nexcelom的科學家們早已開發(fā)出其他方法來應對各種各樣的實驗條件,需要了解的可以給小編留言噢,我們也會在今后的文章中作詳細介紹,敬請期待!

參考文獻

【1】Somanchi S S, McCulley K J, Somanchi A, et al. A novel method for assessment of natural killer cell cytotoxicity using image cytometry[J]. PLoS One, 2015, 10(10): e0141074.

電話:021-5886 0038
郵箱:info@nexcelom.com.cn

來源:耐細隆生物儀器(上海)有限公司
聯(lián)系電話:021-60645803
E-mail:chunhong.li@revvity.com

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