過往的很多研究基于體外培養(yǎng)細胞來源的外泌體開展功能研究,這就在一定程度上有別于體內(nèi)真實微環(huán)境中的外泌體,因此直接研究組織來源的外泌體在這一點上就體現(xiàn)出了很大的優(yōu)勢。今年1月份新晉期刊Blood Cancer Discov雜志發(fā)表了一項研究腫瘤微環(huán)境來源的外泌體功能的文章[1]。該文研究了慢性淋巴細胞白血。–LL)脾臟組織來源的外泌體影響CD8+T細胞的功能,減弱CD8+T細胞對CLL細胞的殺傷能力,從而促進CLL進展。值得一提的是該研究利用組學技術一步步挖掘外泌體的功能機制,其分析思路非常值得大家借鑒。
1.外泌體合成和分泌與CLL具有顯著相關性
研究人員通過分析外泌體合成和分泌途徑中相關分子的表達,試圖找到CLL和外泌體間的聯(lián)系。首先通過檢索GEO數(shù)據(jù)庫發(fā)現(xiàn)了CLL病人的B細胞中外泌體合成相關基因的表達要顯著高于健康人(圖1左),并且某些基因如Rab35、Rab40c在預后差的病人(IGHVUM)中顯著高于那些預后好的病人(IGHVM)(圖1左),這說明了CLL與更多的外泌體合成和分泌具有相關性。之后研究者納入了144例CLL患者,通過RT-qPCR檢測了7個外泌體合成和分泌相關基因的表達,鑒別了Rab27a和RAB31與預后不良顯著相關,高表達兩個基因的患者的OS顯著降低(圖1右)。這些結(jié)果說明了外泌體與CLL存在密切的關系,在CLL發(fā)生和進展中外泌體發(fā)揮著重要作用。
圖 1. 分析CLL和外泌體合成間的相關性
2.CLL組織微環(huán)境中含有更多的外泌體
圖2. 提取和分析脾臟來源的外泌體
3.CLL外泌體高表達免疫檢查點配體和腫瘤相關miRNA
圖3. 外泌體蛋白組學和miRNA檢測
4.CLL
圖4. LME-sEVs改變CD8+T細胞蛋白組、代謝、表型和功能
5.CLL外泌體通過免疫檢查點配體和miRNA共同行使功能
圖5. LME-sEVs通過蛋白和miRNA調(diào)控CD8+T細胞活性
6.CLL外泌體通過抑制CD8+T細胞活性促進CLL進展
其次在正常小鼠中注射來源于Rab27a/Rab27b突變的CLL小鼠的腫瘤細胞,這些腫瘤細胞不會生長。但是同時注射LME-sEVs后,接種的CLL細胞恢復生長(圖6中);
最后在喪失CD8+T細胞活性小鼠中同時接種Rab27a/Rab27b突變的CLL小鼠的腫瘤細胞和LME-sEVs處理的CD8+T細胞或者HCME-sEVs處理的CD8+T細胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)了LME-sEVs處理的CD8+T細胞可以顯著增加外周血中CLL細胞的數(shù)量(圖6右)。
以上體內(nèi)實驗說明了腫瘤微環(huán)境中的外泌體通過抑制CD8+T細胞活性,減弱CD8+T細胞對CLL細胞的殺傷能力,從而增加體內(nèi)CLL細胞的數(shù)量,促進疾病惡化。
圖6. 體內(nèi)實驗驗證LME-sEVs的功能
總結(jié)與討論
隨著外泌體的研究越來越多,研究深度越來越深,既往外泌體常規(guī)的研究范式也會受到很大的挑戰(zhàn),除了新穎性,更重要的是找到外泌體與臨床相關性的突破口。本項研究從最源頭的外泌體合成和分泌入手,找到了這一過程與臨床現(xiàn)象密切相關,隨機開展外泌體的機制研究。而機制研究也是摒棄了大量的細胞系實驗,聚焦利用組織來源外泌體,利用原代細胞和動物模型開展功能研究,更加貼近真實場景。利用轉(zhuǎn)錄組和蛋白組等多組學手段分析外泌體及作用的細胞,無偏倚的研究讓結(jié)果分析更加全面和準確。最后本文也提醒我們外泌體或許不只僅靠某一類分子發(fā)揮功能,而是依賴于多種分子共同執(zhí)行特定的作用,所以需要同步考慮外泌體的蛋白、miRNA等其他分子。
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相關文獻
Gargiulo E, Viry E, Morande PE, Largeot A, Gonder S, Xian F et al. Extracellular Vesicle Secretion by Leukemia Cells In Vivo Promotes CLL Progression by Hampering Antitumor T-cell Responses. Blood Cancer Discov. 2023;4(1):54-77.