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5mC DNA甲基化應(yīng)用:介導(dǎo)茶樹(shù)組織功能分化和重要風(fēng)味物質(zhì)合成調(diào)控

瀏覽次數(shù):397 發(fā)布日期:2023-8-29  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
在植物中,5mC DNA甲基化修飾(簡(jiǎn)稱(chēng)5mC甲基化)是一個(gè)重要而保守的表觀基因標(biāo)記,參與基因組穩(wěn)定性、基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控、發(fā)育調(diào)控、非生物脅迫響應(yīng)、代謝物合成等多種調(diào)控。茶樹(shù)(Camellia sinensis(L.)O.Kuntze)是一種缺乏成熟遺傳轉(zhuǎn)化系統(tǒng)的非模式作物,迄今為止,對(duì)這種重要飲料植物的表觀遺傳學(xué)維度的研究很少。5mC甲基化在茶樹(shù)生長(zhǎng)發(fā)育(采前加工)以及采前和采后加工中風(fēng)味物質(zhì)合成中的作用尚不清楚。
 
2023年08月01日,中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)基因組所孔維龍為第一作者和通訊作者、中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)基因組所張興坦研究員為共同通訊作者在《Hortic. Res.》雜志在線發(fā)表了題為“5mC DNA methylation modification-mediated regulation in tissue functional differentiation and important flavor substance synthesis of tea plant (Camellia sinensis L.)”的研究論文,該研究利用全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(WGBS)和對(duì)應(yīng)的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序分析等實(shí)驗(yàn)揭示了5mC DNA甲基化修飾介導(dǎo)的茶樹(shù)組織功能分化和重要風(fēng)味物質(zhì)合成調(diào)控機(jī)制。
標(biāo)題:5mC DNA methylation modification-mediated regulation in tissue functional differentiation and important flavor substance synthesis of tea plant (Camellia sinensis L.)(5mC DNA甲基化修飾介導(dǎo)的茶樹(shù)組織功能分化和重要風(fēng)味物質(zhì)合成調(diào)控)
發(fā)表期刊:Horticulture Research      
發(fā)表日期:2023年08月01日    
影響因子:IF 8.7/ 1區(qū)
技術(shù):全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(WGBS)、RNA-seq、代謝組等

樣品及方法:
以國(guó)家品種“鐵觀音”烏龍茶為材料,采葉標(biāo)準(zhǔn)為一芽二葉或三葉。所有新鮮的葉子都在下午4點(diǎn)左右采摘(新鮮樣本)。收獲后的鮮葉先在陽(yáng)光下萎凋35分鐘,然后轉(zhuǎn)移到室內(nèi)萎凋15分鐘(萎凋處理樣本)。萎凋后,用搖床以25 r/min對(duì)茶葉進(jìn)行三次搖動(dòng)(搖動(dòng)處理樣本)。隨機(jī)采集100g樣品作為新鮮、萎凋和搖動(dòng)的三個(gè)處理樣品,每個(gè)處理設(shè)置三個(gè)獨(dú)立的生物學(xué)重復(fù)。共收集9個(gè)樣本進(jìn)行代謝組、RNA-seq和WGBS-seq測(cè)序。
 
摘要
本研究應(yīng)用無(wú)偏好性的全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(WGBS)對(duì)烏龍茶采摘后加工過(guò)程中的四個(gè)關(guān)鍵采前組織(根、葉、花和果)和兩個(gè)加工葉片進(jìn)行了全面的DNA甲基化分析。分析結(jié)果表明,四個(gè)關(guān)鍵組織之間的差異性5mC甲基化與組織功能分化密切相關(guān),并且與非組織特異性表達(dá)基因相比,負(fù)責(zé)組織特異性功能的組織特異性基因維持相對(duì)較低的5mC甲基水平。根中CsAlaDC和TS/GS基因的低甲基化修飾為根中茶氨酸(theanine)的顯性合成提供了分子基礎(chǔ)。此外,對(duì)采集后葉片的5mC DNA甲基化組學(xué)、代謝組學(xué)和轉(zhuǎn)錄組學(xué)的綜合分析表明,烏龍茶加工過(guò)程中風(fēng)味代謝物含量變化與相應(yīng)代謝物合成基因的轉(zhuǎn)錄水平變化密切相關(guān),且這些重要合成基因的轉(zhuǎn)錄水平變化受5mC甲基化嚴(yán)格調(diào)控。進(jìn)一步研究結(jié)果表明,加工過(guò)程中的一些關(guān)鍵基因受5mC甲基化調(diào)控,促進(jìn)α-法尼烯(α-Farnesene)、橙花叔醇(nerolidol )、脂質(zhì)(lipids)和茶多酚(catechins)等味覺(jué)物質(zhì)的重要香氣代謝物含量變化。本研究結(jié)果不僅闡明了5mC甲基化在采前和采后加工中重要風(fēng)味物質(zhì)合成中的關(guān)鍵作用,還為未來(lái)茶葉品質(zhì)的改善或全組織高茶氨酸品種的選育提供了表觀突變相關(guān)基因靶點(diǎn)。
 
研究結(jié)果:
(1)5mC甲基化在茶樹(shù)采前組織功能分化中起重要調(diào)控作用
圖1:茶樹(shù)的四個(gè)關(guān)鍵采前組織中不同5mC甲基化水平
(A)不同組織的WGBS-seq數(shù)據(jù)的Pearson相關(guān)系數(shù)熱圖。
(B)組織中CHH、CHG和CG的甲基化水平。
(C)組織特異性表達(dá)基因數(shù)量。
(D)組織特異性和非組織特異性表達(dá)基因5mC甲基化水平差異。
(E)根組織特異性低甲基化基因的GO注釋。
 
 
 
(2)5mC甲基化參與調(diào)控茶樹(shù)根系中顯性茶氨酸合成和非生物脅迫響應(yīng)


圖2:5mC甲基化參與調(diào)控茶樹(shù)根系中顯性茶氨酸合成和非生物脅迫響應(yīng)。
(A) 茶氨酸合成的關(guān)鍵底物和基因。
(B) CsAlaDC和TS/GS基因在四種茶樹(shù)組織中的表達(dá)水平。
(C) 四種茶樹(shù)組織中CsAlaDC和TS/GS基因的甲基化水平。
(D) CsAlaDC和TS/GS基因在四種茶樹(shù)組織中的相對(duì)表達(dá)水平。
(E) 保守CHH高甲基化基因和低甲基化基因的GO注釋。
 

(3)烏龍茶采后加工過(guò)程中應(yīng)激引起的代謝物變化
圖3:烏龍茶采后加工過(guò)程中代謝物的變化。
(A) 1377種次生代謝物的分類(lèi)。
(B) UPLC–MS/MS檢測(cè)非揮發(fā)性代謝物含量的相關(guān)結(jié)果。
(C) GC–MS檢測(cè)揮發(fā)性代謝物含量的相關(guān)性結(jié)果。
(D) 三個(gè)加工處理點(diǎn)所有代謝物的總含量變化。
(E) 三個(gè)加工處理點(diǎn)不同類(lèi)別代謝物含量的變化。
(F) 各加工點(diǎn)新出現(xiàn)的代謝物。


(4)烏龍茶采后加工過(guò)程中差異代謝物及差異表達(dá)基因的鑒定

圖4:烏龍茶采后加工中的差異代謝物(DMs)和差異表達(dá)基因(DEGs)。
(A) 不同加工處理點(diǎn)之間的次生代謝物差異。
(B) 所有差異次生代謝物的K-均值聚類(lèi)。
(C) 各子類(lèi)的詞云圖(Word cloud map)。
(D) 主要香氣物質(zhì)含量變化熱圖。
(E) 重要茶多酚含量變化熱圖。
(F) 不同處理點(diǎn)之間的DEG數(shù)量。
(G) DEG的KEGG富集通路。
C:新鮮茶葉;W:萎凋處理茶葉;T:搖動(dòng)處理茶葉。
 

(5)烏龍茶采后加工中的單堿基分辨5mC甲基化模式
圖5:烏龍茶三個(gè)重要加工處理點(diǎn)的單堿基分辨5mC DNA甲基化圖譜。
(A) 基因密度(a)、轉(zhuǎn)座子密度(b)、GC含量(c)、CG、CHH和CHG 5mC甲基化水平(d-f)和基因表達(dá)水平(g)的Circos圖。在d–g中,從外到內(nèi)依次為:新鮮茶葉、萎凋處理茶葉和搖動(dòng)處理茶葉。
(B) 烏龍茶三個(gè)重要加工處理點(diǎn)的DNA甲基化水平。
(C) 烏龍茶三個(gè)加工處理點(diǎn)的甲基化胞嘧啶數(shù)量。
(D) 每個(gè)加工點(diǎn)5mC甲基化水平分類(lèi)。
(E) 三個(gè)不同加工點(diǎn)的基因和轉(zhuǎn)座子甲基化水平。
C和D中:C1–C3,新鮮茶葉;W1–W3,萎凋處理茶葉;T1–T3,搖動(dòng)處理茶葉。


(6)5mC甲基化參與采后加工中風(fēng)味物質(zhì)相關(guān)基因表達(dá)的表觀調(diào)控
圖6:烏龍茶加工過(guò)程中DMR和DMR介導(dǎo)的DEG。
(A) DMR的數(shù)量。
(B) DMR在基因組中的位置分布。
(C) DMR介導(dǎo)的DEG數(shù)量。
(D) DMR介導(dǎo)的與重要風(fēng)味物質(zhì)相關(guān)的DEG基因表達(dá)水平熱圖。
(E) 橙花叔醇合成酶(NES)基因的WGBS-seq(CHH)和RNA-seq數(shù)據(jù)的IGV(Integrative Genomics Viewer)可視化。(F) WGBS-seq(CHH)的IGV可視化和4-coumaroyl-CoA (CsTGY13G0000351)基因的RNA-seq數(shù)據(jù)。


參考文獻(xiàn):
Kong W, Zhu Q, Zhang Q, Zhu Y, Yang J, Chai K, Lei W, Jiang M, Zhang S, Lin J, Zhang X. 5mC DNA methylation modification-mediated regulation in tissue functional differentiation and important flavor substance synthesis of tea plant (Camellia sinensis L.). Hortic Res. 2023 Aug;10(8):uhad126.
來(lái)源:深圳市易基因科技有限公司
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標(biāo)簽: DNA甲基化
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