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RNA m6A修飾在促進玉米籽粒發(fā)育過程中的DNA甲基化互作研究中的應用

瀏覽次數(shù):590 發(fā)布日期:2024-1-31  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
mRNA中的N6-甲基腺苷(m6A)和DNA中的5-甲基胞嘧啶(5mC)對于調控基因表達和調節(jié)植物生長發(fā)育具有關鍵功能。然而,m6A和5mC之間的互作是一個難以捉摸的領域,在植物中的機制尚不清楚。
 
2023年11月23日,中國農業(yè)大學賀巖教授課題組以“RNA m6A modification facilitates DNA methylation during maize kernel development“為題在《Plant Physiol》雜志發(fā)表研究論文,研究揭示了玉米(Zea mays)籽粒發(fā)育過程中m6A和5mC之間的密切關系,至少部分歸因于ZmMTA(Zea mays MTA,m6A關鍵參與因子)和ZmDDM1(5mC關鍵參與分子)之間的相互作用,且RNA修飾和DNA甲基化之間的互作可能在植物中保守。

 

標題:RNA m6A modification facilitates DNA methylation during maize kernel development(RNA m6A修飾促進玉米籽粒發(fā)育過程中的DNA甲基化)
時間:2023-11-28
期刊:Plant Physiology
影響因子:IF 7.4/ 1區(qū)
技術平臺:MeRIP-seq(m6A-seq)、BS-seq、RNA-seq等

研究摘要:
本研究通過m6A-seq和BS-seq等分析揭示了玉米(Zea mays)中m6A和5mC之間通過mRNA腺苷甲基化酶(ZmMTA)(m6A甲基轉移酶復合體的關鍵因子)與DNA甲基化1(ZmDDM1)(調控DNA甲基化的關鍵染色質重塑因子)減少之間的相互作用而發(fā)生串擾。與無m6A修飾的基因相比,帶有m6A修飾的基因具有更高水平的DNA甲基化。ZmMTA功能喪失導致玉米胚胎發(fā)生和胚乳發(fā)育過程中嚴重停滯,導致m6A修飾基因5'區(qū)CHH甲基化顯著降低。而ZmDDM1功能喪失對ZmMTA相關活性沒有明顯影響。這項研究在玉米籽粒發(fā)育過程中建立了m6A和5mC之間的直接聯(lián)系,并提供了RNA修飾和DNA甲基化之間相互作用的見解。

研究結果
(1)RNA m6A修飾與DNA甲基化之間的相互作用

圖1:m6A修飾和DNA甲基化的協(xié)作。

 
A. 在genebody及其±2 kb區(qū)域中,比較每個序列背景(CG,CHG和CHH)的所有基因(帶有或不帶有m6A修飾)的DNA甲基化水平。m6A修飾基因是指具有m6A peaks的基因,m6A沉默基因是指沒有m6A peaks的基因。總基因n=20316,帶有m6A修飾基因n=7472,不帶有m6A修飾基因n=12844。使用雙側Wilcoxon符號秩檢驗進行統(tǒng)計分析:*P<0.05,**P<0.01和***P<0.001。
B. 不同m6A強度的基因的DNA甲基化譜。所有m6A修飾基因根據(jù)m6A強度從高到低分為3組,分別用紅色、藍色和黑色表示。將具有高水平和中等水平m6A修飾基因分別與具有中等水平和低水平m6A修飾的基因進行比較。每組基因n=2490。統(tǒng)計學分析采用雙側Wilcoxon符號秩檢驗:*P<0.05,**P<0.01,**P<0.001。
 
(2)ZmMTA在玉米胚乳發(fā)生和胚乳發(fā)育中的作用

圖2:ZmMTA功能喪失嚴重阻礙了玉米的胚胎發(fā)生和胚乳發(fā)育。

 
A. ZmMTA基因結構圖和EMS突變位點。黑色框和白色框分別表示外顯子和UTR。紅色框表示MT-A70域的編碼區(qū)。EMS突變位點用三角形標記。
B. zmmta-1/+在14 DAP(左)和成熟期(右)的自交穗。代表性的突變核用紅色箭頭表示。對圖像進行數(shù)字提取以進行比較。Bar=1 cm。
C. 4~14 DAP野生型和zmmta-1突變體核的石蠟切片。這些切片用堿性品紅染色。Bars=1 mm。
D. 突變位點的野生型和zmmta-1突變體進行Sanger測序。
E. Western blot檢測野生型和ZmMTA-1突變體核中ZmMTA蛋白的表達。
F. 野生型和zmmta-1突變體在14 DAP時的流式細胞術圖譜。C值顯示在每個peak頂部。
G. LC-MS/MS分析顯示野生型和zmmta-1突變體的總mRNA m6A豐度。數(shù)據(jù)代表3個生物學重復的平均值±SD。統(tǒng)計分析采用t檢驗。
 
(3)zmmta功能喪失影響大量基因的表達和胚胎發(fā)育

圖3:野生型和zmmta-1突變體中轉錄組比較分析。

 
A~B.  相對于野生型,zmmta-1突變體中的DEGs(A)或TEs(B)。DEGs(或TEs)(倍數(shù)變化≥2,F(xiàn)DR<0.01)用紅色或藍色表示,而未變化的基因(或TEs)用灰色表示。
C.   zmmta-1胚胎中下調(上)或上調(下)DEG的GO富集分析。圓圈的大小表示DEG的數(shù)量。顏色表示每個GO項的-log 10(P值)。

(4)ZmMTA對于m6A修飾基因的5'區(qū)域的mCHH是必需的

圖4:ZmMTA促進m6A修飾基因5'區(qū)的mCHH。

 
A) 野生型和zmmta-1突變體中的整體DNA甲基化水平。使用Fisher精確檢驗對野生型和zmmta-1突變體進行統(tǒng)計分析,共有3個生物學重復:*P<0.05和**P<0.01。
B) 野生型和zmmta-1突變體中帶有或不帶有m6A修飾的基因中DNA甲基化(CG,CHG和CHH)的宏基因譜。野生型和zmmta-1突變體中m6A+的n=7472,m6A-的n=12844。使用野生型和zmmta-1突變體之間的雙側Wilcoxon符號秩和檢驗進行統(tǒng)計分析:*P<0.05,**P<0.01和***P<0.001。
 
(5)ZmMTA與ZmDDM1的相互作用
圖5:ZmMTA與ZmDDM1相互作用。
 
A) ZmMTA和ZmDDM1的Co-IP(共免疫沉淀)實驗。野生型ZmDDM1 的IP產物中檢測到ZmMTA,但未從ZmDDM1突變體中檢測到。同樣,在野生型的ZmMTA-IP產物中檢測到ZmDDM1,但未從ZmMTA-1突變體中檢測到。
B) Y2H(酵母雙雜交)實驗顯示ZmMTA與ZmDDM1A或ZmDDM1 B的相互作用。AD表示GAL4激活域;BD表示GAL4 DNA結合結構域。使用空的pGADT7和pGBKT7載體之間的相互作用作為陰性對照。
C) LCI(熒光共振能量轉移)實驗顯示N.benthamiana葉片中ZmMTA與ZmDDM1A或ZmDDM1B的相互作用。左上部分顯示互作信號;其他3個部分顯示陰性對照信號。每個部分旁邊的標簽表示特定的組合。熒光信號強度表示相互作用活性。
 
(6)RNA m6A修飾促進ZmDDM1靶向TSS
圖6:m6A促進ZmDDM1與TSS(轉錄起始位點)的結合
 
A. 餅圖描繪了ZmDDM1A和ZmDDM1 B在帶有或不帶有m6A修飾基因的5個片段的peaks分布。ZmDDM1-occupied基因是指具有ZmDDM1 peaks基因,而ZmDDM1-unoccupied基因指沒有ZmDDM2 peaks的基因。
B. 野生型ZmDDM1占比Metaplots圖;趍6A修飾和ZmDDM1A(左)和ZmDDM1B(右)占比情況將所有表達的基因分為4類。在有或沒有ZmDDM1A基因之間進行比較。使用雙側Wilcoxon符號秩檢驗進行統(tǒng)計分析:*P<0.05、**P<0.01和***P<0.001。
C. 野生型基因mCHH的Metagene圖譜。所有表達基因根據(jù)m6A修飾和ZmDDM1A(左)和ZmDDM1B(右)被分為4類。在有或沒有ZmDDM1B基因之間進行比較。使用雙側Wilcoxon符號秩檢驗進行統(tǒng)計分析:*P<0.05、**P<0.01和***P<0.001。
 
(7)ZmDDM1變化對ZmMTA相關活性沒有影響
圖7:ZmDDM1對ZmMTA相關活性沒有影響。
 
A. 野生型和zmddm1突變體中ZmMTA轉錄本豐度的RT-qPCR分析。數(shù)據(jù)代表3個生物學重復的平均值±SD。使用Student t檢驗進行統(tǒng)計分析。
B. 野生型和zmddm1突變體中ZmMTA蛋白豐度的Western blot分析。
C. 野生型和zmddm1突變體中的ZmMTA蛋白免疫定位分析。Bars=5μm。
D. LC-MS/MS分析顯示野生型和zmddm1突變體中的整體mRNA m6A豐度。數(shù)據(jù)代表三個生物學重復的平均值±SD。使用Student t檢驗進行統(tǒng)計分析。
E. 野生型和zmddm1突變體中m6A位點沿標準化轉錄本分布的Metagene圖譜。
F. 餅圖描繪野生型(左)和zmddm1突變體(右)中非重疊轉錄本片段中的m6A peaks分布。
 
研究小結
本研究通過MeRIP-seq和BS-seq的綜合分析揭示了m6A和5mC之間的全基因組關聯(lián),并表明了RNA m6A甲基轉移酶ZmMTA與染色質重塑因子ZmDDM1相互作用,并可能促進其靶向TSS。本研究揭示了m6A和5mC之間的相互作用,并表明RNA修飾信息從RNA直接傳遞至DNA,以調控復雜的表觀基因組?紤]到m6A和5mC在介導基因表達中的廣泛作用,這種動態(tài)變化可能在許多細胞環(huán)境中具有重要的調控功能。

參考文獻:
Luo JH, Guo T, Wang M, Liu JH, Zheng LM, He Y. RNA m6A modification facilitates DNA methylation during maize kernel development. Plant Physiol. 2023 Nov 23. pii: 7444906. doi: 10.1093/plphys/kiad625. PubMed PMID: 37995374.
來源:深圳市易基因科技有限公司
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標簽: RNA甲基化
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