這些方法原理不同,也各有利弊。比如許多實(shí)驗(yàn)室常用的乳酸脫氫酶 (LDH) 釋放法是通過檢測(cè)細(xì)胞裂解后釋放到培養(yǎng)基中的LDH來(lái)反映細(xì)胞的殺傷程度的。然而免疫細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞中都含有LDH,死亡后都會(huì)釋放到培養(yǎng)基中,因此酶標(biāo)儀的讀數(shù)無(wú)法特異性地區(qū)分出腫瘤細(xì)胞的死亡,結(jié)果容易受到死亡的免疫細(xì)胞的影響。另外,該方法需設(shè)置多組對(duì)照,如無(wú)釋放組(不加免疫細(xì)胞)和最大釋放組(加Triton X-100完全裂解)來(lái)確定最低和最高的OD值讀數(shù)。如果對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞鋪板密度不均勻,極易造成誤差,甚至出現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組殺傷效率為負(fù)數(shù)的奇怪結(jié)果。
再比如Luciferase報(bào)告基因法,是將Luciferase的基因片段連接在與T細(xì)胞激活相關(guān)基因 (比如IL-2或NFAT) 的啟動(dòng)子之后,通過Luciferase的表達(dá)來(lái)反映T細(xì)胞的激活程度。簡(jiǎn)言之是在分子水平檢測(cè)T細(xì)胞的激活。做該實(shí)驗(yàn)需自行改造T細(xì)胞或購(gòu)買改造好的T細(xì)胞系,不夠靈活,具有較大的局限性。
列表中的所有方法還有一個(gè)共同缺憾,就是看不到細(xì)胞。有圖才有有真相,細(xì)胞殺傷連個(gè)細(xì)胞的影子都沒有,光讓咱們相信這些數(shù)字,心里是不是有點(diǎn)虛?實(shí)驗(yàn)失敗了也很難找原因。另外每次實(shí)驗(yàn)只能測(cè)一個(gè)時(shí)間點(diǎn),想測(cè)多個(gè)時(shí)間點(diǎn)得鋪多塊板,想想就好累!
檢測(cè)免疫細(xì)胞殺傷有沒有既靠譜又簡(jiǎn)單的方法呢?誰(shuí)說(shuō)沒有呢?科技的發(fā)展日新月異,小編今天就給大家介紹一下做免疫細(xì)胞殺傷的最新方法:
Calcein AM染色法
• Calcein AM是一種可以滲透細(xì)胞膜的染料,通常用來(lái)檢測(cè)真核細(xì)胞的存活率
• 在活細(xì)胞中,本來(lái)不發(fā)熒光的Calcein AM被胞內(nèi)酯酶水解后轉(zhuǎn)化為成發(fā)綠色熒光的Calcein
• 在細(xì)胞殺傷實(shí)驗(yàn)中,用 Calcein AM標(biāo)記靶細(xì)胞,發(fā)出綠色熒光;效應(yīng)細(xì)胞不染色以示區(qū)別。當(dāng)靶細(xì)胞裂解后,由于胞內(nèi)的Calcein釋放到培養(yǎng)基中,細(xì)胞失去熒光。通過計(jì)算綠色熒光細(xì)胞的數(shù)量即可得到活靶細(xì)胞數(shù)和細(xì)胞殺傷效率。
*詳細(xì)原理可查閱我司Nexcelom Bioscience和德克薩斯大學(xué)MD Anderson癌癥研究院合作發(fā)表的文獻(xiàn)【1】。
這么好的方法當(dāng)然需要一個(gè)強(qiáng)大的檢測(cè)儀器來(lái)支撐 – Celigo成像細(xì)胞定量分析儀:
● 明場(chǎng)+四色熒光
● 全孔成像,圖片清晰,適用于6-1536孔板
● 定量分析全孔細(xì)胞數(shù)目
● 軟件自帶流式設(shè)門分析功能
● 高速同步成像和分析,15分鐘內(nèi)完成一塊96孔板的免疫殺傷檢測(cè)
現(xiàn)在小編就以NK細(xì)胞的ADCC(抗體依賴細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞殺傷)為例子來(lái)展示用Celigo做免疫細(xì)胞殺傷的效果:
• 全孔成像,分析孔內(nèi)每一個(gè)細(xì)胞
• 避免細(xì)胞分布不均帶來(lái)的局部視野誤差
• 多時(shí)間點(diǎn)檢測(cè)時(shí),避免因細(xì)胞遷移而造成的局部視野前后不一致
• 綠色熒光通道展示被Calcein AM標(biāo)記的靶細(xì)胞
• Celigo軟件將細(xì)胞圈定,便于用戶查看細(xì)胞識(shí)別是否準(zhǔn)確
• 在不同時(shí)間點(diǎn)將板放入Celigo進(jìn)行檢測(cè)
• 隨著時(shí)間的推進(jìn),綠色熒光細(xì)胞(即活的靶細(xì)胞)的數(shù)量逐漸減少
*每孔下方數(shù)字為0小時(shí)綠色熒光細(xì)胞密度
• Celigo軟件自動(dòng)生成每孔綠色銀光細(xì)胞隨時(shí)間變化的曲線,各孔殺傷情況一目了然
• 原始數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為Excel或GraphPad格式進(jìn)行后續(xù)分析
t0為0小時(shí);t為檢測(cè)時(shí)間點(diǎn);treated為加抗體組;control為未加抗體組
• 如上計(jì)算公式即可算出每孔的細(xì)胞裂解率
• 每孔數(shù)據(jù)都由該孔0小時(shí)和檢測(cè)時(shí)間點(diǎn)的熒光細(xì)胞數(shù)相比較得出,不需額外設(shè)置對(duì)照組,避免了不同孔間鋪板密度的差異造成的誤差
• 根據(jù)數(shù)據(jù)繪制出細(xì)胞裂解曲線
• 將明場(chǎng)和綠色熒光圖片疊加,可觀察NK細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞間的相互作用
• 在一定抗體濃度下,隨著時(shí)間的推進(jìn),NK細(xì)胞逐漸在腫瘤細(xì)胞周圍聚集,時(shí)間越久聚團(tuán)越明顯,活的腫瘤細(xì)胞也越少
• 在相同時(shí)間點(diǎn),隨著抗體濃度的增高,NK細(xì)胞逐漸在腫瘤細(xì)胞周圍聚集,濃度越高聚團(tuán)越明顯,活的腫瘤細(xì)胞也越少
有了這樣的圖片,你是不是會(huì)底氣十足地在組會(huì)上匯報(bào):腫瘤細(xì)胞真的被免疫細(xì)胞殺得片甲不留,此乃我親眼所見!
除了NK細(xì)胞, Calcein AM染色法也能運(yùn)用在PBMC、CIK、中性粒細(xì)胞、CAR-T等其他免疫細(xì)胞的殺傷。不過呢,Calcein AM也有一個(gè)小小缺點(diǎn),那就是它的熒光半衰期太短,所以該方法只適用于時(shí)程較短(< 6小時(shí))的殺傷實(shí)驗(yàn)。如果你的殺傷實(shí)驗(yàn)時(shí)程較長(zhǎng)也不用擔(dān)心,Nexcelom的科學(xué)家們?cè)缫验_發(fā)出其他方法來(lái)應(yīng)對(duì)各種各樣的實(shí)驗(yàn)條件,需要了解的可以給小編留言噢,我們也會(huì)在今后的文章中作詳細(xì)介紹,敬請(qǐng)期待!
參考文獻(xiàn)
【1】Somanchi S S, McCulley K J, Somanchi A, et al. A novel method for assessment of natural killer cell cytotoxicity using image cytometry[J]. PLoS One, 2015, 10(10): e0141074.
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