研究人員通常會在下游分析中遭遇DNA樣本量有限或不足的問題。QIAGEN的全基因組擴(kuò)增技術(shù)通過以包括單細(xì)胞在內(nèi)的小量樣本或珍貴樣本擴(kuò)增獲得基因組DNA,解決此類難題。REPLI-g Kit能夠準(zhǔn)確地復(fù)制原始DNA樣本,不會造成偏差,擴(kuò)增后的DNA可以直接應(yīng)用于廣泛的遺傳學(xué)分析。 什么是全基因組擴(kuò)增(whole gemome amplification)? 基于PCR的WGA技術(shù) 基于PCR的WGA技術(shù)主要有兩種:簡并寡核苷酸PCR (DOP-PCR)技術(shù)(1)和擴(kuò)增前引物延伸(PEP)技術(shù)(2)。這兩種技術(shù)之間的主要區(qū)別在于PEP技術(shù)使用隨機(jī)引物和低PCR退火溫度,而DOP-PCR技術(shù)則使用半簡并寡核苷酸(例如CGACTCGAGNNNNNNATGTGG)和更高的退火溫度。兩種方法中都使用了Taq DNA聚合酶,使得擴(kuò)增長度限制在3 kb(平均片段長度為400–500 kb)以內(nèi),并且會在擴(kuò)增序列中引入一些錯(cuò)誤。不僅如此,有研究發(fā)現(xiàn)這些技術(shù)的基因組覆蓋度不夠完整,并會在擴(kuò)增中產(chǎn)生偏向性——由于引物優(yōu)先結(jié)合某些特定區(qū)域,造成DNA擴(kuò)增產(chǎn)物中的一些序列相對增多。 多重置換擴(kuò)增的WGA技術(shù) REPLI-g使用了稱為多重置換擴(kuò)增(MDA)的恒溫基因組擴(kuò)增技術(shù),該技術(shù)包含了隨機(jī)六聚體與變性DNA的結(jié)合過程,以及使用Phi 29聚合酶在恒定溫度下進(jìn)行的鏈置換合成過程。每個(gè)置換鏈上添加引物后,形成分枝狀的DNA結(jié)構(gòu)網(wǎng)絡(luò)。Phi 29聚合酶不會從基因組DNA模板上面解離下來,這使得生成的無偏差DNA片段可延伸至100 kb。該酶還具有3’端→5’端的外切酶校正活性,相比基于Taq DNA聚合酶的方法,能夠提供高達(dá)1000倍的保真度(參見上述基于PCR的WGA技術(shù))。Phi 29聚合酶由獨(dú)特的REPLI-g優(yōu)化緩沖液進(jìn)行支撐,能夠方便的克服如發(fā)卡環(huán)一類的二級結(jié)構(gòu)困難,在擴(kuò)增過程中避免滑脫、定制和聚合酶解離等現(xiàn)象的發(fā)生。這樣無偏差的DNA片段能夠合成至100 kb的長度。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
MDA技術(shù)與基于PCR的WGA方法相比的優(yōu)勢 傳統(tǒng)的基因組DNA擴(kuò)增方法包括費(fèi)時(shí)的EBV轉(zhuǎn)化細(xì)胞系建立過程,以及之后使用隨機(jī)或簡并寡核苷酸引物進(jìn)行的PCR全基因組擴(kuò)增步驟。為其他廠商所普遍采用的基于PCR的WGA法,也會產(chǎn)生非特異性的擴(kuò)增干擾以及不完全的位點(diǎn)覆蓋度。某些案例中可能生成短于1 kb長度的DNA片段,在很多后續(xù)應(yīng)用中無法使用。通常情況下,由于使用了低保真度的Taq DNA聚合酶,使生成的DNA中包含了很高的堿基突變率,因此形成了容易出錯(cuò)的擴(kuò)增,導(dǎo)致如單堿基對突變、STR縮短和擴(kuò)張等不良后果的發(fā)生。REPLI-g則沒有這些缺點(diǎn),它能對整個(gè)基因組進(jìn)行高度均一的擴(kuò)增,反應(yīng)過程中位點(diǎn)序列的偏差及突變率達(dá)到最小。 |
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WGA技術(shù)的應(yīng)用
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