羊源性成分核酸檢測試劑盒(恒溫熒光法)
◆ 產(chǎn)品說明
物種鑒定系列基于獨特的恒溫熒光檢測技術,可針對食品、飼料等樣品中動物源性成分的特異核酸片段進行擴增,儀器實時監(jiān)測擴增過程中的熒光信號變化,自動判讀結果。本產(chǎn)品用于羊源性成分的檢測,檢出限為0.5%。
◆ 產(chǎn)品組成(48測試)
021031M |
|
試劑 |
含量 |
A-羊源-I |
1200μL × 1支 |
B-I |
55μL × 1支 |
C-I |
1200μL × 1支 |
NG-I |
50μL × 2支 |
PG-羊源-I |
50μL × 1支 |
◆ 適用儀器
Dhelix 1610、Dhelix 3210、ESE Tube Scanner、Genie II、Deaou-308c等恒溫熒光檢測儀,ABI 7500,LightCycler480,CFX 96等熒光PCR儀。
◆ 自備耗材和儀器
①滅菌1.5mL或2.0mL離心管;②滅菌0.2mL PCR管或八聯(lián)管;③冰盒;④移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套滅菌吸頭;⑤離心機;⑥渦旋混勻器;⑦金屬浴
◆ 注意事項
1.本試劑檢測靈敏度高。為了防止污染,實驗要分區(qū)操作。
1)第一區(qū):試劑準備區(qū)。
2)第二區(qū):樣本制備區(qū)。
3)第三區(qū):模板添加區(qū)。
4)第四區(qū):擴增及產(chǎn)物分析區(qū)。
★ 分區(qū)之間最好進行物理性隔離,避免人為因素造成的污染。
2.實驗過程中穿戴工作服和乳膠手套,不同區(qū)域獨立使用工具,需更換手套和實驗服。
3.嚴格按照操作步驟操作,試劑配制和加樣等步驟請嚴格按照說明書要求在冰盒上操作。
4.反應液中的成分對光敏感,應避光保存。試劑使用前要完全解凍,但應避免反復凍融,推薦使用前離心30秒,并按檢測頻次將反應液以適當體積分管保存。
5.反應結束后,擴增管請置于密封袋內丟棄,當日清理,開蓋易造成氣溶膠污染,禁止開蓋。
6.不同批號試劑請勿混合使用,在有效期內使用。
◆ 樣品處理
參照《SB/T 10923-2012 肉及肉制品中動物源性成分的測定 實時熒光PCR法》或其他標準處理樣品,制備的樣本保存待用。
①樣品的采集和制備是動物源性鑒別的重要步驟,為防止交叉污染,應使用一次性消耗品,研缽應經(jīng)160℃干烤2h,其他不宜干烤或高壓處理的器皿應使用1%次氯酸鈉溶液浸泡。②取樣應盡量采取肌肉組織,對于同一批樣品,應多點采集合并后,作為一份樣品進行均質,提取DNA。③采樣過程應快速完成,將采取的樣品迅速放入組織攪碎機中進行均質成糜狀,充分混勻,取0.1g充分混勻的樣品,采用液氮研磨或均質器均質。
詳細步驟請按照標準操作或查閱食安通軟件。
◆ 實驗操作
將試劑完全解凍,各組分離心30s。
1. 試劑配制(試劑準備區(qū),放置于冰盒中進行):
若有N個待檢樣品,則參照下表,按照N+2個數(shù)量計算各組分用量(N個待檢樣品+1個陰性對照+1個陽性對照),將反應液置于0.6ml或者1.5ml離心管中,渦旋混勻,離心30秒,分裝于0.2ml PCR管中,并向每管加入1滴C-I(約20μl)。
試劑 |
使用量 |
A-羊源-I |
22×(N+2)μL |
B-I |
1×(N+2)μL |
反應液總體積 |
23×(N+2)μL |
2.模板制備(樣本制備區(qū))
建議使用試劑配套動物源性成分DNA提取系列產(chǎn)品,具體過程詳見產(chǎn)品說明書。
3.添加模板(模板添加區(qū),放置于冰盒中進行)
在步驟1中已含有反應液的PCR管中加入2μL模板,順序為NG-I、待測樣品模板、PG-羊源-I。渦旋混勻30s,離心1min,立即進行擴增反應。
4. 擴增反應(擴增及產(chǎn)物檢測區(qū))
①恒溫儀器63℃條件下反應45min。
②若使用熒光定量PCR儀,則熒光基團選擇FAM,淬滅基團選擇None,將63℃ 15 s,63℃ 45 s作為一個循環(huán),于63℃ 45 s處收集熒光信號,45個循環(huán)。
其他儀器請參照儀器說明書進行設置。
◆ 結果判定
①儀器自動判定結果,若顯示“陽性”,則樣品中含有羊源性成分;若顯示“陰性”,則樣品中不含有羊源性成分或含量低于檢測限。
②在熒光定量PCR儀上,根據(jù)有無“S”型擴增曲線判定結果。若有“S”型擴增曲線,則樣品中含有羊源性成分;若無“S”型擴增曲線,則樣品中不含有羊源性成分或含量低于檢測限。