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One Step RT- PCR PreMix(染料法)使用說明書

瀏覽次數(shù):2030 發(fā)布日期:2014-11-11  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
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One Step RT- PCR PreMix(染料法)
使 用 說 明 書
 
【前言】
本產品提供了一個靈敏、高效、快速地擴增并檢測 RNA 的完整系統(tǒng)。One Step RT- PCR preMix 包
含所有 RT-PCR 所需的、并經優(yōu)化的 Reaction Buffer、RT 酶混合物等,使用者只需加入適量的引物和待檢
樣品,即可進行 One Step RT- PCR 檢測。
本產品使用高效率 M-MLV 反轉錄酶和化學修飾的熱啟動 Taq  DNA  聚合酶,高保真的染料,為
RT-PCR 反應提供了更高的產量及靈敏度、特異性。
【規(guī)格】
50 Reactions/Kit
【試劑盒組成】
A2010A0116s                  50test
Master Mix      750μl      1 支
Enzyme Mix    500μl      1 支
A2010A0116L                  100test
Master Mix      750μl      1 支*2
Enzyme Mix    500μl      1 支*2
【用戶自備的試劑、器材】
  1.引物
試驗前應準備好用于檢測目的基因的引物。引物應用HPLC或PAGE純化。
2.實驗用水
使用DEPC處理的PCR用純水。
3.待檢樣品
總RNA,mRNA
4. RNasefree & DNasefree  的tip頭,離心管,薄壁PCR管等
5. 各種規(guī)格的移液器
6.Realtime PCR儀
本產品適用于下列Realtime PCR儀:ABI PRISM ® 7700、ABI PRISM ® 7500、ABI PRISM ® 7300、ABI
PRISM ® 7000、MJ Opticon  、BIORAD iCycler  、Roch   LightCycler TM  等Real time PCR儀上使用,具體
使用方法請參照相應儀器的說明書。
【反應液配制】
反應液組份  加量 (μl)  終濃度  備注
One Step RT - PCR Reaction Buffer  15    
Enzyme Mix  10    
上游引物  5  300nM  用戶自備
下游引物  5  300nM  用戶自備
待檢樣品  5-10  10pg~100ng  用戶自備
DEPC H 2 O  5-0    用戶自備
總體積  50    
注:1 通常初次使用本試劑時,可用引物濃度 300nM 進行實驗,根據實驗結果具體情況,在 200~1000nM 范圍內調整引
物濃度。
2 引物、待檢樣品的具體加量用戶可以根據實際情況調整,同時增減 DEPC 水用量,保證總反應體積不變即可。
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【RT-PCR 擴增檢測】
1 將反應管放入熒光 PCR 擴增儀進行擴增檢測。
2 循環(huán)參數(shù)設定(請參照各類儀器的操作說明進行設置)
步驟  溫度(℃) 時間  循環(huán)數(shù)(次)
1  逆轉錄反應  50  15-30 分鐘 1
2  預變性  95  5 分鐘  1
3  變性  95  10 秒
4  退火、延伸及檢測熒光 60  45-60 秒
 
40-50
步驟 4 中 60℃時熒光檢測,檢測通道:FAM/HEX/VIC/ROX/CY5
 
注:以上擴增條件為實例,用戶應根據引物的 Tm 值及擴增片段的大小來確定適合的變性時間、退火溫度,退火時間和
循環(huán)次數(shù),黑體字部分必須保留。
【保存條件】
本產品原則上在-20℃以下冷凍保存,避免反復凍融。如果在短期內需持續(xù)使用時,融解后可在4℃
保存,最長可保存1周。
【注意事項】
1.本產品為研究用試劑。請勿作為診斷、臨床試劑用。
2.為保證實驗結果的準確性和可靠性,請?zhí)貏e注意以下事項:
2.1 使用已校準的移液器,選用進口一次性使用的 PCR 反應管、離心管、tip 頭等進行樣本處理及配液等操作,所有用具
應不含 DNA 酶和 RNA 酶。
2.2 引物設計過程中應盡可能避免發(fā)夾結構、二聚體等現(xiàn)象的發(fā)生, PCR目標片段最好小于200bp,盡可能在150bp以內。
2.3 實驗樣品盡可能新鮮,提取過程應嚴防 RNA 酶污染及操作不當導致的 RNA 降解。
2.4 使用本產品時建議對 RT-PCR 擴增條件、引物濃度和樣品用量進行調整,選擇最適當?shù)囊餄舛、樣品濃度?PCR 擴
增條件。
3.本產品使用前應在室溫充分融解,并用漩渦震蕩器充分混勻。
4.統(tǒng)一配液后分裝以減少加樣誤差,每次實驗應設置陰性對照。
5.禁止標記 PCR 反應管,避免外源性熒光信號干擾。
6.PCR 反應管中不能有氣泡,否則會產生非特異的熒光信號。若有氣泡,可先用手指將氣泡彈破,然后再低速離心消除。
7.實時熒光 PCR 儀器連續(xù)進行實驗時,最好間隔一小時以上再使用。
8.實時熒光 PCR 儀需經常校正和清潔載樣板板孔。
9.若使用Roch  LightCyclerTM  熒光PCR儀,應將毛細管放在專門套管中,以便分裝反應體系和加入待檢樣品。前述操作
完畢應低速離心數(shù)秒再將毛細管垂直緩慢放入樣品架,以免折斷;若發(fā)生折斷,應小心取出,用專用小毛刷擦拭干凈后
方可進行擴增。
10.實驗室應嚴格分區(qū),避免 PCR 產物污染。
 
品質保證:
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