【前情回顧】PCR疑難問題粉碎機(一)——終點PCR
實時熒光定量PCR(quantitative PCR, qPCR)通過對PCR擴增反應(yīng)中的每一個循環(huán)產(chǎn)物熒光信號的實時監(jiān)測從而實現(xiàn)對起始模板的定性及定量分析。目前它主要通過兩種方式——熒光染料或者熒光標(biāo)記的探針對PCR產(chǎn)物進(jìn)行標(biāo)記跟蹤,實時在線監(jiān)控反應(yīng)過程,并結(jié)合相應(yīng)的軟件對產(chǎn)物進(jìn)行分析,計算待測樣品模板的初始濃度。
熒光定量PCR,qPCR
熒光染料法
在PCR反應(yīng)體系中,加入過量熒光染料,該染料只與雙鏈DNA小溝結(jié)合,并不與單鏈DNA鏈結(jié)合,而且在游離狀態(tài)不發(fā)出熒光,只有摻入DNA雙鏈中才可以發(fā)光,因此,在PCR體系中,隨著特異性PCR產(chǎn)物的指數(shù)擴增,每個循環(huán)的延伸階段,染料摻入雙鏈DNA中,其熒光信號強度與PCR產(chǎn)物的數(shù)量呈正相關(guān)。
武漢艾美捷科技專注為客戶提供整體打包方案,可提供EvaGreen、SolisGreen和SYBR等多種染料qPCR預(yù)混液。
EvaGreen、SolisGreen、SYBR染料
熒光染料包括飽和熒光染料和非飽和熒光染料,非飽和熒光染料的典型代表就是現(xiàn)在最常用的SYBR GreenⅠ,EvaGreen、SolisGreen屬于飽和熒光染料。非飽和熒光染料在濃度高的時候會對PCR過程產(chǎn)生抑制,所以在熒光定量實驗時使用濃度稍低,染料不能占據(jù)DNA雙鏈上的所有位置。當(dāng)PCR隨著溫度上升,雙鏈逐漸解鏈,染料會從已解開的單鏈上脫落,然后結(jié)合到臨近的尚未解鏈的雙鏈中去繼續(xù)發(fā)熒光。這種染料重排導(dǎo)致在較小的溫度變化內(nèi),雖然DNA雙鏈的解鏈過程不同,但熒光值是幾乎不變的,也就是說,其溶解曲線不能精確反應(yīng)雙鏈的解鏈情況。
所以,對于非飽和染料,其溶解曲線分辨率相對較低,只能區(qū)分特異性的產(chǎn)物,不能分辨單堿基的差異。飽和熒光染料在DNA雙鏈中所有可結(jié)合位點內(nèi)都會有染料分子存在,染料與DNA的結(jié)合呈飽和狀態(tài),隨著溫度上升,在雙鏈解鏈、染料脫離過程中,未解鏈的雙鏈部分不存在染料可以結(jié)合的位點,染料不能發(fā)生重排。所以使用飽和染料制作的溶解曲線分辨率很高,可以精確反映DNA雙鏈隨著溫度的解鏈情況,精度可以達(dá)到單堿差異的區(qū)分。
熒光標(biāo)記的探針法
PCR擴增時,加入一對引物的同時再加入一個特異性的熒光探針。該探針為一直線型的寡核苷酸,兩端分別標(biāo)記一個熒光報告基團和一個熒光淬滅基團, 探針完整時,報告基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收,PCR 儀檢測不到熒光信號; PCR擴增時(在延伸階段),Taq 酶的5'→3'外切酶活性將探針酶切降解,使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離,從而熒光監(jiān)測系統(tǒng)可接收到熒光信號,即每擴增一條 DNA 鏈,就有一個熒光分子形成,實現(xiàn)了熒光信號的累積與 PCR 產(chǎn)物形成完全同步,這也是定量的基礎(chǔ)所在。
染料法VS探針法
1.探針法通過探針可以增加反應(yīng)收集信號的特異性,只有探針結(jié)合的片段上發(fā)生擴增才能收集到信號,探針法能夠用多重體系反應(yīng),能夠預(yù)測和提前進(jìn)行反應(yīng)條件的優(yōu)化,缺點是要合成探針,成本高
2.染料法經(jīng)濟實惠,可以做溶解曲線,分析全部PCR產(chǎn)物的TM值,缺點就是特異性沒有探針法好
類型 |
貨號 |
名稱 |
染料法 |
EvaGreen染料 |
08-36-00001 |
5×HOT FIREPol® EvaGreen® qPCR Supermix 5×qPCR 預(yù)混液 |
08-24-00001 |
5×HOT FIREPol® EvaGreen® qPCR Mix Plus (ROX) 5×qPCR預(yù)混液,ROX |
08-25-00001 |
5×HOT FIREPol® EvaGreen® qPCR Mix Plus (no ROX) 5×qPCR預(yù)混液,無ROX |
08-26-00001 |
5×HOT FIREPol® EvaGreen® qPCR Mix Plus (Capillary) 5×qPCR預(yù)混液,Capillary |
SolisGreen染料 |
28-41-00001 |
SolisFAST™ SolisGreen® qPCR Mix (no ROX) 5×qPCR預(yù)混液,ROX |
28-46-00001 |
SolisFAST™ SolisGreen® qPCR Mix (ROX) 5×qPCR預(yù)混液,無ROX |
SYBR染料 |
QP031 |
qPCR預(yù)混液2.0,ROX |
QP041 |
qPCR預(yù)混液2.0,無ROX |
探針法 |
08-17-00001 |
5×HOT FIREPol ® Probe Universal qPCR Mix |
QP036 |
5×探針qPCR預(yù)混液,ROX |
QP046 |
5×探針qPCR預(yù)混液,無ROX |
08-16-00001 |
5×HOT FIREPol® Probe qPCR Mix Plus (Capillary) |
多重qPCR
|
08-01-00001 |
5x HOT FIREPol® Multiplex qPCR Mix 5x多重探針qPCR預(yù)混液 |
08-02-00001 |
5x HOT FIREPol® Multiplex qPCR Mix (Rox) 5x多重探針qPCR預(yù)混液,Rox |
08-03-00001 |
5x HOT FIREPol® Multiplex qPCR Mix (Purple) 5x多重探針qPCR 預(yù)混液,Purple |
快速qPCR
|
28-21-00001 |
SolisFAST™ Probe qPCR Mix with UNG (no ROX) 快速探針qPCR預(yù)混液,含UNG,無ROX |
28-22-00001 |
SolisFAST™ Probe qPCR Mix with UNG (ROX) 快速探針qPCR預(yù)混液,含UNG,ROX |
28-23-00001 |
SolisFAST™ Probe qPCR Mix with UNG (Purple) 快速探針qPCR預(yù)混液,含UNG,Purple |
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qPCR系統(tǒng)知識匯總
在qPCR 技術(shù)中重要的參數(shù)指標(biāo)有哪些?
擴增及溶解曲線:擴增曲線是PCR過程中,以循環(huán)數(shù)為橫坐標(biāo),以熒光強度為縱坐標(biāo)所繪制的曲線。主要用于反映qPCR的動態(tài)進(jìn)程;溶解曲線是用來驗證擴增產(chǎn)物特異性的,如果產(chǎn)物是單一條帶,溶解曲線就會出現(xiàn)單峰,如果有引物二聚體或其它非特異性擴增,就會出現(xiàn)至少兩個峰。
熒光域值(threshold): 是在熒光擴增曲線上人為設(shè)定的一個值,它可以設(shè)定在熒光信號指數(shù)擴增階段任意位置上,但一般熒光域值的缺省設(shè)置是PCR反應(yīng)前3-15個循環(huán)熒光信號標(biāo)準(zhǔn)偏差的10倍,即:threshold。
Ct 值:是指每個反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號到達(dá)設(shè)定域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。將已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋進(jìn)行qPCR,按照起始DNA量由多到少的順序等間隔得到一系列擴增曲線。Ct值與起始模板數(shù)的對數(shù)值之間存在線性關(guān)系,可以制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。未知濃度的樣品也得到Ct值,代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,就可以求出未知樣品的起始模板量。
擴增曲線一般分為哪幾個階段
熒光擴增曲線一般分為基線期、指數(shù)增長期和平臺期。在qPCR擴增早期,擴增的熒光信號被熒光背景信號所掩蓋,無法判斷產(chǎn)物量的變化,此時即為基線期,
PCR反應(yīng)過程中產(chǎn)生的DNA拷貝數(shù)是呈指數(shù)形式增加的,隨著反應(yīng)循環(huán)數(shù)的增加,最終PCR反應(yīng)不再以指數(shù)形式生成模板,從而進(jìn)入平臺期,在該時期,擴增產(chǎn)物已不再呈指數(shù)級的增加,PCR的終產(chǎn)物量與起始模板量之間無線性關(guān)系,只有在熒光信號的指數(shù)增長期,PCR產(chǎn)物量的對數(shù)值與起始模板量之間存在線性關(guān)系,可以選擇在這個階段進(jìn)行定量分析。
ROX染料是什么作用?
ROX(Passive Reference Dye)是一種惰性參比染料,在qPCR反應(yīng)中能被qPCR儀檢測到。ROX不參與qPCR反應(yīng),熒光信號值不會隨著qPCR擴增而改變。實驗過程中很多因素會引起孔間差異:不均勻的照明,孔與孔之間光學(xué)因素(液滴、氣泡)的因素,反應(yīng)體系的濃度不同…… 可以用ROX作為陽性參比,對其他熒光信號進(jìn)行歸一化校正,以提高數(shù)據(jù)的精確度。
Ct值多少才算理想
一般來說Ct值在30以下都可以說實驗結(jié)果是可靠的,30以上基本可以說明該基因沒有擴增,但也不是絕對的,需要輔以溶解曲線加以解釋。
*** qPCR 常見問題分析 ***
問題類型 |
原因分析 |
無Ct值出現(xiàn) |
* 檢測熒光信號的步驟有誤:一般染料法采用72℃延伸時采集,探針法則一般在退火結(jié)束時或延伸結(jié)束采集信號;
* 引物或探針降解:可通過PAGE電泳檢測其完整性;
* 模板量不足:對未知濃度的樣品應(yīng)從系列稀釋樣本的最高濃度做起;
* 模板降解:避免樣品制備中雜質(zhì)的引入及反復(fù)凍融的情況 |
Ct 值出現(xiàn)過晚(Ct>38) |
* 擴增效率低:反應(yīng)條件不夠優(yōu)化,設(shè)計更好的引物或探針、適當(dāng)降低退火溫度、增加鎂離子濃度等;
* PCR各種反應(yīng)成分的降解或加樣量不足;
* PCR產(chǎn)物太長:一般采用80-150bp的產(chǎn)物長度 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系不佳 |
* 加樣存在誤差:使得標(biāo)準(zhǔn)品不呈梯度;
* 標(biāo)準(zhǔn)品出現(xiàn)降解:應(yīng)避免標(biāo)準(zhǔn)品反復(fù)凍融,或重新制備并稀釋標(biāo)準(zhǔn)品
* 引物或探針不佳:重新設(shè)計更好的引物和探針;
* 模板中存在抑制物,或模板濃度過高 |
擴增曲線異常,比如 S 型曲線 |
* 參比染料設(shè)定不正確:預(yù)混液不加參比染料時,選NONE;
* 模板的濃度太高或者降解;
* 熒光染料的降解 |
負(fù)對照有信號、溶解曲線不止一個主峰 |
* 引物設(shè)計不夠優(yōu)化:應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)
* 引物濃度不佳:適當(dāng)降低引物的濃度,并注意上下游引物的濃度配比
* 鎂離子濃度過高:適當(dāng)降低鎂離子濃度,或選擇更合適的mix 試劑盒; |
擴增效率低 |
* 反應(yīng)試劑中部分成分特別是熒光染料降解;
* 反應(yīng)條件不夠優(yōu)化:可適當(dāng)降低退火溫度;
* 反應(yīng)體系中有PCR反應(yīng)抑制物:一般是加入模板時所引入,應(yīng)先把模板適度稀釋,再加入反應(yīng)體系中,減少抑制物的影響 |
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三點:
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六觀:
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