非洲豬瘟病毒核酸提取操作中需要關(guān)注的細(xì)節(jié)
瀏覽次數(shù):3248 發(fā)布日期:2022-6-23
來(lái)源:濟(jì)凡生物公眾號(hào)
非洲豬瘟 (African swine fever, ASF) 是由非洲豬瘟病毒 (ASF virus, ASFV) 引起的一種嚴(yán)重的動(dòng)物傳染病,非洲豬瘟強(qiáng)毒感染豬的發(fā)病率和死亡率高達(dá) 100 %。在世界范圍內(nèi),目前還沒(méi)有研發(fā)出可以有效預(yù)防非洲豬瘟的疫苗,非洲豬瘟可防、可控、不可治,所以做好養(yǎng)殖場(chǎng)生物安全防護(hù)和通過(guò)檢測(cè)及監(jiān)測(cè)病毒做到“精準(zhǔn)拔牙”是防控非洲豬瘟。
非洲豬瘟病毒簡(jiǎn)介:
非洲豬瘟病毒屬于一類特殊的DNA病毒-核質(zhì)大DNA病毒(nucleocytoplasmic large DNA virus ,NCLDV)。整個(gè)病毒的直徑達(dá)到260-300nm, 相當(dāng)于730個(gè)甲肝病毒,140個(gè)ZIKA病毒,10個(gè)HSV皰疹病毒。
圖1 非洲豬瘟病毒整體結(jié)構(gòu)(左:5層切面圖;右:衣殼層結(jié)構(gòu))(Wang et al. 2019)
非洲豬瘟主要經(jīng)過(guò)口或鼻腔直接接觸,或由于接觸污染的媒介物(受感染豬的組織、血液、排泄物和分泌物)而發(fā)病。病毒通過(guò)涉及動(dòng)力蛋白和網(wǎng)格蛋白介導(dǎo)的內(nèi)吞作用和巨胞飲作用的復(fù)雜過(guò)程進(jìn)入宿主細(xì)胞。病毒感染機(jī)體后,病毒感染途徑從豬的扁桃體和下頜淋巴結(jié)中的單核巨噬細(xì)胞開(kāi)始,隨著淋巴液和血液進(jìn)入循環(huán)系統(tǒng),對(duì)毛細(xì)血管、動(dòng)脈、靜脈和淋巴結(jié)的內(nèi)皮細(xì)胞進(jìn)行侵襲,導(dǎo)致相應(yīng)組織、器官出現(xiàn)出血、漿液性滲出、血栓和梗死等病理變化,繼而造成全身性的出血病變。
圖2 ASFV通過(guò)內(nèi)吞途徑進(jìn)入宿主細(xì)胞圖示 (Galindo and Alonso 2017)
非洲豬瘟病毒核酸提取純化:
由于非瘟病毒傳播能力強(qiáng)、致病率高、致死率強(qiáng)、病毒復(fù)制能力強(qiáng)且很難根除等特點(diǎn),建議各大有條件的豬場(chǎng)(具備企業(yè)自己的實(shí)驗(yàn)室)保持一定的ASFV病毒檢測(cè)能力。雖然定期檢測(cè)會(huì)花費(fèi)大量的人力、物力和財(cái)力,但如果檢測(cè)出病毒,通常處于早期階段,避免更大的損失。病毒檢測(cè)基于不同的原理的方法很多,其中操作簡(jiǎn)便、靈敏度高且應(yīng)用較廣的的方法即非瘟病毒核酸提取搭配下游熒光定量PCR進(jìn)行檢測(cè),而核酸提取又以操作簡(jiǎn)便、通量高、節(jié)省人力的磁珠法自動(dòng)化提取為主。成功的核酸提取的決定因素有三個(gè),分別是前處理、試劑和操作流程。
1. 樣本類型及前處理
01 血拭子及全血
在病毒排毒階段,血液中的病毒含量較高,靜脈采血應(yīng)激大且有滴漏發(fā)生病毒擴(kuò)散的風(fēng)險(xiǎn),所以尾尖拭子采血操作簡(jiǎn)便,應(yīng)激小,污染風(fēng)險(xiǎn)低。血拭子作為核酸提取樣本類似稀釋后的全血樣本,由于采樣困難,并且血液存在病毒滯后問(wèn)題,所以血液樣本一般不適合早期“拔牙”監(jiān)測(cè)。血液樣本可以直接進(jìn)行提取操作,如樣本有凝血結(jié)塊,可短暫靜置或離心,取上清進(jìn)行核酸提取操作。
02 口鼻拭子
非瘟野毒排毒過(guò)程中,口鼻液比血液檢出病毒稍早。豬場(chǎng)在野毒“拔牙”中會(huì)經(jīng)常使用口鼻拭子進(jìn)行病毒檢測(cè)。
口鼻拭子作為核酸提取樣本可能會(huì)帶有豬源細(xì)胞, 所以下游病毒擴(kuò)增試劑盒可以采用內(nèi)源性內(nèi)參非瘟擴(kuò)增試劑盒,可以監(jiān)測(cè)病毒核酸提取步驟。除此之外,樣本也會(huì)混有豬口鼻附近的飼料、泥土、糞便等,如果含有此類抑制物較多可能會(huì)對(duì)核酸提取和擴(kuò)增造成不同程度的影響?诒鞘米涌梢灾苯舆M(jìn)行提取操作,如含雜質(zhì)過(guò)多可短暫靜置或離心,取上清進(jìn)行核酸提取操作。
03 咽拭子
變異的非瘟毒株,在口鼻液中檢出率會(huì)較低,而此時(shí)咽部的扁桃體病毒含量較多,類似于人類采集新冠樣本一樣,從咽部采樣有利于檢出病毒。
咽拭子作為核酸提取樣本與口鼻拭子樣本類似。
04 口腔液
豬口腔液也就是豬唾液,一般采用咬繩或者唾液收集包等方法對(duì)豬唾液進(jìn)行收集。
唾液樣本中不僅含有多種酶,而且也會(huì)混有泥土、糞便、嘔吐物等含抑制物較多的成分,所以從豬唾液樣本中提取病毒核酸對(duì)核酸的提取效率和純度要求很高,豬唾液可以直接進(jìn)行提取操作,如含雜質(zhì)過(guò)多可短暫靜置或離心,取上清作為核酸提取的樣本。
05 環(huán)境樣本
非瘟病毒對(duì)溫度、PH和腐敗抵抗力較強(qiáng)。除了從豬身上采集樣本外,也需要從豬場(chǎng)和人員流動(dòng)較大的場(chǎng)所進(jìn)行環(huán)境采樣,檢測(cè)環(huán)境樣本可以有效的監(jiān)測(cè)豬場(chǎng)病毒感染情況,一般采用生理鹽水紗布或者生理鹽水拭子對(duì)豬舍、門口、生活區(qū)、緩沖區(qū)、車輛、人員等位置進(jìn)行采樣檢測(cè)。環(huán)境樣本經(jīng)常被作為日常病毒檢測(cè),也是豬場(chǎng)復(fù)產(chǎn)所必需做的病原檢測(cè)。
環(huán)境樣本種類復(fù)雜多樣,較臟的環(huán)境紗布樣本會(huì)比拭子樣本含有更多的抑制物,采集到的樣本會(huì)含有糞便、泥土、飼料、灰塵等一系列含腐殖酸的成分,所以比較臟的環(huán)境樣本對(duì)核酸提取試劑的要求也比較高。環(huán)境樣本可以直接進(jìn)行提取操作,如含雜質(zhì)過(guò)多可短暫靜置或離心,取上清進(jìn)行核酸提取操作。
06 組織樣本
研究表明,豬感染非瘟病毒后,體內(nèi)器官感染順序依次是脾臟、扁桃體、淋巴結(jié)等,隨著時(shí)間推移,不同組織中檢出的效果便不再有差異。
組織樣本作為核酸提取樣本,一般需要用剪刀剪下1-2個(gè)黃豆粒大小組織,用2ml左右生理鹽水進(jìn)行組織研磨,研磨結(jié)束后取離心后上清進(jìn)行病毒核酸提取及檢測(cè)。
07 其他樣本
糞便、精液、去勢(shì)液等其他樣本。由于糞便樣本在經(jīng)過(guò)腸胃的消化后病毒含量較低,精液等樣本采集困難,所以此類樣本也較少應(yīng)用。
對(duì)于此類樣本的核酸提取難度也較大,糞便中腐殖酸等抑制物含量很高,提取后核酸易抑制下游擴(kuò)增;普通裂解液對(duì)裂解精液細(xì)胞釋放核酸較困難,一般會(huì)用DTT作為樣本前處理步驟。
2. 試劑
磁珠法提取核酸的方法是以超順磁性的納米磁性粒子為基質(zhì),這種磁性粒子在高濃度離液劑的條件下可通過(guò)氫鍵和靜電特異的吸附核酸,而蛋白質(zhì)或其它非特異吸附的少量雜質(zhì)經(jīng)洗滌被去除,最后用低鹽緩沖液或RNase Free ddH2O洗脫核酸。純化的核酸可適用于各種常規(guī)操作,包括熒光定量PCR、NGS相關(guān)的各種下游分子實(shí)驗(yàn)。
此方法具有以下優(yōu)點(diǎn):
- 安全無(wú)毒,不使用傳統(tǒng)方法中的酚/氯仿等有毒試劑;
- 操作簡(jiǎn)單,提供預(yù)分裝試劑,無(wú)需長(zhǎng)時(shí)間接觸實(shí)驗(yàn)試劑,整合流程自動(dòng)化;
- 高通量提取,同時(shí)批量處理8/16/32/48/64/96個(gè)樣本;
- 滿足微量生物樣本核酸提取的要求。
圖3 磁棒法提取核酸圖示(圖片來(lái)源于網(wǎng)絡(luò))
一般磁珠法核酸提取中的磁珠是硅羥基基團(tuán)包被或者羧基基團(tuán)包被的磁珠。其表面包被的基團(tuán)可以在鹽橋作用下與核酸特異性結(jié)合。磁珠生產(chǎn)工藝不同會(huì)造成磁珠大小、磁珠形態(tài)、磁響應(yīng)、基團(tuán)包被量等效果不一,此外,相同的磁珠在不同的試劑體系下結(jié)果也會(huì)千差萬(wàn)別。鑒于豬場(chǎng)樣本種類極其復(fù)雜多樣,因此,我們建議在相同樣本及試劑體系下,對(duì)不同磁珠進(jìn)行測(cè)試,篩選出性能更好的磁珠。下表數(shù)據(jù)舉例說(shuō)明不同磁珠對(duì)于樣本兼容性效果不同,從表1數(shù)據(jù)可以明顯看出相較于其他磁珠,磁珠H的提取效率和樣本兼容性均較好。
表1 不同樣本背景稀釋的非瘟質(zhì)控品使用不同磁珠提取效果比較
3. 操作
01 裂解步驟
磁珠法核酸提取過(guò)程中的裂解和結(jié)合步驟可以分開(kāi)也可以合并,主要區(qū)別是磁珠在哪個(gè)步驟開(kāi)始參與核酸提取。一般會(huì)選擇裂解結(jié)合兩步驟共同進(jìn)行,可以將磁珠與核酸結(jié)合步驟做到作用最大化。
裂解步驟中裂解液一般會(huì)含有較高濃度的離液鹽和表面活性劑,不僅為磁珠與核酸結(jié)合提供高鹽環(huán)境,而且可以將核酸從細(xì)胞中裂解釋放出來(lái)。
而裂解步驟需不需要加蛋白酶K,一般跟樣本類型有關(guān),血液類樣本由于含有較多蛋白及細(xì)胞成分,輔助加入蛋白酶K會(huì)促進(jìn)核酸從核酸蛋白復(fù)合體中釋放。而背景干凈的環(huán)境樣本,由于裂解液對(duì)于核酸的釋放作用已足夠,所以是否加入蛋白酶K對(duì)結(jié)果幾乎無(wú)影響。
其次裂解時(shí)間及裂解溫度對(duì)于裂解充不充分也影響較大。相同裂解溫度下的裂解時(shí)間長(zhǎng)短會(huì)影響裂解效果,時(shí)間過(guò)短裂解不充分影響核酸釋放,時(shí)間過(guò)長(zhǎng)可能會(huì)造成核酸片段化;相同裂解時(shí)間下的裂解溫度高低也會(huì)影響裂解效果,溫度過(guò)低可能造成裂解不充分影響核酸釋放,溫度過(guò)高可能也會(huì)造成核酸降解風(fēng)險(xiǎn),但實(shí)際上裂解溫度有可能是50-90°C。根據(jù)不同廠家的核酸提取儀性能和預(yù)分裝耗材的差異,程序設(shè)置溫度可能會(huì)與預(yù)分裝中實(shí)際運(yùn)行溫度相差10-20°C,裂解溫度及時(shí)長(zhǎng)需要根據(jù)裂解液的裂解能力做出選擇。
02 漂洗步驟
漂洗步驟對(duì)于復(fù)雜的豬場(chǎng)樣本種類來(lái)說(shuō)也是重要步驟,漂洗液的漂洗能力對(duì)于背景干凈的樣本和背景復(fù)雜的樣本需要做到兼容,既不能造成簡(jiǎn)單樣本的核酸損失,也需要做到對(duì)復(fù)雜樣本除雜的效果。同樣地,漂洗次數(shù)和漂洗時(shí)間長(zhǎng)短也需要做到對(duì)簡(jiǎn)單樣本和復(fù)雜樣本地兼容。
03 洗脫步驟
核酸提取試劑洗脫液一般為低鹽緩沖液或 RNase Free ddH2O。洗脫步驟影響核酸提取的因素是洗脫時(shí)間和溫度,與裂解步驟類似,洗脫時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或者過(guò)短,洗脫溫度過(guò)高或者過(guò)低,都可能會(huì)對(duì)核酸從磁珠中的洗脫效率和核酸降解產(chǎn)生影響。洗脫時(shí)間和溫度的選擇需要根據(jù)提取病毒的特點(diǎn)及下游擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)行選擇。
此外,除了核酸提取,真實(shí)結(jié)果的產(chǎn)出還需要提取后靈敏高效的熒光定量檢測(cè)試劑。正如上文提到的,豬場(chǎng)的環(huán)境紗布樣本和唾液樣本含量其中含有較多的泥土、飼料、唾液粘蛋白、糞便等成分,如果說(shuō)提取試劑對(duì)此類樣本提取的核酸純度不夠,含有較多腐殖酸等抑制物,或者搭配了抗逆效果不太好的下游擴(kuò)增試劑盒,此時(shí)很容易抑制擴(kuò)增。所以下游擴(kuò)增選用抗逆性好和擴(kuò)增靈敏度高的擴(kuò)增試劑盒對(duì)于結(jié)果的準(zhǔn)確度也是至關(guān)重要的。
濟(jì)凡生物致力于成為國(guó)內(nèi)領(lǐng)先的生物樣本保存、提取、檢測(cè)整體解決方案的科技創(chuàng)新型公司。經(jīng)過(guò)長(zhǎng)期探索與創(chuàng)新,濟(jì)凡現(xiàn)已擁有一套成熟的核酸純化體系,以其優(yōu)異的操作便利性,樣本兼容性和高檢出率,深受客戶認(rèn)可,截止目前,已提供超過(guò)1500萬(wàn)頭份病毒提取試劑。大量數(shù)據(jù)表明濟(jì)凡磁珠法動(dòng)物病毒DNA/RNA提取試劑盒具有優(yōu)異的提取性能。
產(chǎn)品優(yōu)勢(shì):
1.樣本兼容性好:通用提取各種DNA和RNA病毒樣本、包括唾液、拭子、紗布、全血、血清、組織勻漿液等各種樣本或各種病毒保存液中的樣本;
2.操作簡(jiǎn)單快速:配合自動(dòng)化提取儀,僅需加入樣本,15min即可完成提;
3.高檢出率:病毒提取效率高,尤其對(duì)低拷貝病毒樣本具有較優(yōu)的檢出性能。
▼樣本兼容性好
▼競(jìng)品對(duì)比數(shù)據(jù)
參考文獻(xiàn):
[1] Berensmeier, Sonja. 2006. “Magnetic Particles for the Separation and Purification of Nucleic Acids.” Applied Microbiology and Biotechnology. https://doi.org/10.1007/s00253-006-0675-0.
[2] Galindo, Inmaculada, and Covadonga Alonso. 2017. “African Swine Fever Virus: A Review.” Viruses. MDPI AG. https://doi.org/10.3390/v9050103.
[3] Iker, Brandon C., Kelly R. Bright, Ian L. Pepper, Charles P. Gerba, and Masaaki Kitajima. 2013. “Evaluation of Commercial Kits for the Extraction and Purification of Viral Nucleic Acids from Environmental and Fecal Samples.” Journal of Virological Methods 191 (1): 24–30. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2013.03.011.
[4] Klenner, Jeanette, Claudia Kohl, Piotr W. Dabrowski, and Andreas Nitsche. 2017. “Comparing Viral Metagenomic Extraction Methods.” Current Issues in Molecular Biology 24: 59–70. https://doi.org/10.21775/CIMB.024.059.
[5] Wang, Nan, Dongming Zhao, Jialing Wang, Yangling Zhang, Ming Wang, Yan Gao, Fang Li, et al. 2019. “Architecture of African Swine Fever Virus and Implications for Viral Assembly.” Science 366 (6465): 640–44. https://doi.org/10.1126/science.aaz1439.